Evaluación del desempeño reproductivo de la cucha mariposa glyptoperichthys gibbiceps con diferentes inductores hormonales
Incluye figuras y tablas.
- Autores:
-
Torres Romero, Jonattan Mauricio
- Tipo de recurso:
- Trabajo de grado de pregrado
- Fecha de publicación:
- 2018
- Institución:
- Universidad de los Llanos
- Repositorio:
- Repositorio Digital Universidad de los LLanos
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- Acceso en línea:
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- Palabra clave:
- Ehc
Inducción hormonal
Pleco leopardo
Reproducción
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Reproduction
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Arias CJA. 2002. Biología reproductiva y reproducción inducida de Brycon siebenthalae. Tesis de Doctorado Univ. Del Valle, Cali, Colombia. 112 p. Arias AJJ, Hernández RJL. 2009. Efectos del extracto hipofisiario de carpa común y el análogo de la GnRH sobre la maduración final del oocito y el desove de la cachama negra (Colossoma macropomum). Revista científica FCV-LUZ, 19(2): 486-494. Aya-Baquero E, Arias J. 2011. Reproducción inducida de Pimelodus pictus con extracto de hipófisis de carpa (EHC) y Ovaprim®. Rev.MVZ Córdoba, 16(1):2317-2323. Brzuska E, Adamek J. 1999. Artificial spawning of European catfish, Silurus glanis L.: stimulation of ovulation using LHRH-a, OVAPRIM® and carp pituitary extract. Aquaculture Research, 30: 59-64. Brzuska E. 2003. Artificial propagation of African catfish (Clarias gariepinus): differences between reproduction effects after stimulation of ovulation with carp pituitary homogenate or GnRH-a and dopaminergic inhibitor. Czech J. Anim. 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Evaluación de la reproducción inducida de nicuro Pimelodus blochii (Telostei: Pimelodidae) utilizando diferentes inductores hormonales. Rev. MVZ Córdoba, 18(2):3512-3517. Richter CJJ, Viveen WJ, Eding EH, Sukkel M, Rhotuis AJ, Van Hoof MF, Van den Verg FG, Van Oordt PG. 1987. The significance of photoperiodicity, water temperature and nag inherent endogenous rhythm for the production of viable eggs by African catfish Clarias gariepinus, Kept in subtropical ponds in Israel and under Dutch hatchery condition. Aquaculture, 63:169-185. Suzuki H, Agostinho A, Winemiller K. 2000. Relationship between oocyte morphology and reproductive strategy in loricariid catfishes of the Paraná River, Brazil. J. Fish Biol, 57: 791–80. Ureña F, Ávila E, Rodríguez L, Landines M., Kohrdis U. 2005. Guías de producción de peces ornamentales de la Orinoquía Colombiana. Loricáridos. Universidad Nacional de Colombia. Facultad de medicina veterinaria y zootecnia. Bogotá, 85p. Urbinati UE. 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Collazos Lasso, Luis Felipevirtual::209-1AYA BAQUERO, ELIZABETHvirtual::225-1Torres Romero, Jonattan Mauricio2024-10-17T16:34:54Z2024-10-17T16:34:54Z2018Torres Romero, Jonattan M. (2018). Evaluación del desempeño reproductivo de la cucha mariposa glyptoperichthys gibbiceps con diferentes inductores hormonales. [Trabajo de grado, Universidad de los Llanos]. Repositorio digital Universidad de los Llanos.https://repositorio.unillanos.edu.co/handle/001/4518Universidad de los LlanosRepositorio digital Universidad de los Llanoshttps://repositorio.unillanos.edu.coIncluye figuras y tablas.La reproducción en peces es un proceso regulado por diferentes interacciones: ambientales, sociales, neuronales, endocrinas y nutricionales, las cuales son percibidas por los peces y llevadas a las células nerviosas del cerebro, las que a su vez responden produciendo hormonas liberadoras de las gonadotropinas (GnRH) hacia la hipófisis, tales hormonas estimulan la producción de hormonas gonadotrópicas (GtH) que regulan la maduración final de los ovocitos, la ovulación y el desove. El objetivo fue evaluar la reproducción inducida de la cucha mariposa Glyptoperichthys gibbiceps con dos inductores hormonales, en condiciones de cautiverio. Las hembras preseleccionadas (12) para la inducción se marcaron con chaquiras con código de colores en la aleta dorsal. Se evaluó extracto hipofisiario de carpa (EHC) y el análogo de la hormona liberadora de gonadotropinas de salmón sGnRha más Domperidona (Ovaprim®), se evaluaron seis protocolos: T1 (0,5-5,0mg/kg EHC), T2 (0,7-7mg/kg EHC), T3 (0,05-0,5mL/kg Ovaprim®), T4 (0,07-0,7mL/kg Ovaprim®), T5 (0,05mL/kg Ovaprim® - 0,5mg/kg EHC), T6 (0,07mL/kg Ovaprim® - 7,0mg/kg EHC) con dos réplicas cada uno, se utilizaron dosis totales (10% de la dosis en la primera inyección y 90% en la segunda) dividida en dos dosis, e inyectadas con un intervalo de 24 y 15 h respectivamente, de acuerdo al peso corporal esta fue inyectada vía intramuscular. La obtención de ovas se realizó mediante estrujamiento por aplicación de un leve masaje cráneo-ventral entre las 23-24h desde la aplicación de la última inyección hormonal a 26,5Cº de temperatura, sin encontrar diferencias significativas (P>0,05) entre los tratamientos. Las hembras tratadas con Ovaprim® T3(0,05-0,5mL/kg), T4(0,07-0,7mL/kg) y T5(0,5mL/kg Ovaprim® - 0,05mL/kg EHC) no ovularon. Se encontraron diferencias significativas en la variable fecundidad reproductiva entre los tratamientos T2(497±270,1) y T6(1223±0,71) y porcentaje de fertilidad T1(25,5±7,8), T2(19,0±1,4) y T6(5,0±0,7). Estos resultados indican que el T6 con la mezcla (0,07mL/kg Ovaprim® - 7,0mg/kg EHC) presenta una fecundidad reproductiva de 1223±0,71 ovocitos, pero un porcentaje de fertilidad de 5,0±0,7 %. El T1 con EHC (0,5-5,0mL/kg) se obtuvo una fecundidad reproductiva de 624±36,8 ovocitos y un porcentaje de fertilidad de 25,5± 7,8 %. En conclusión el uso de inductores hormonales puede ser efectivo en la reproducción inducida de la cucha mariposa en condiciones de cautiverio, sugiriendo el extracto hipofisiario de carpa (EHC) como el inductor de primera opción para la especie.La reproducción en peces es un proceso regulado por diferentes interacciones: ambientales, sociales, neuronales, endocrinas y nutricionales, las cuales son percibidas por los peces y llevadas a las células nerviosas del cerebro, las que a su vez responden produciendo hormonas liberadoras de las gonadotropinas (GnRH) hacia la hipófisis, tales hormonas estimulan la producción de hormonas gonadotrópicas (GtH) que regulan la maduración final de los ovocitos, la ovulación y el desove. El objetivo fue evaluar la reproducción inducida de la cucha mariposa Glyptoperichthys gibbiceps con dos inductores hormonales, en condiciones de cautiverio. Las hembras preseleccionadas (12) para la inducción se marcaron con chaquiras con código de colores en la aleta dorsal. Se evaluó extracto hipofisiario de carpa (EHC) y el análogo de la hormona liberadora de gonadotropinas de salmón sGnRha más Domperidona (Ovaprim®), se evaluaron seis protocolos: T1 (0,5-5,0mg/kg EHC), T2 (0,7-7mg/kg EHC), T3 (0,05-0,5mL/kg Ovaprim®), T4 (0,07-0,7mL/kg Ovaprim®), T5 (0,05mL/kg Ovaprim® - 0,5mg/kg EHC), T6 (0,07mL/kg Ovaprim® - 7,0mg/kg EHC) con dos réplicas cada uno, se utilizaron dosis totales (10% de la dosis en la primera inyección y 90% en la segunda) dividida en dos dosis, e inyectadas con un intervalo de 24 y 15 h respectivamente, de acuerdo al peso corporal esta fue inyectada vía intramuscular. La obtención de ovas se realizó mediante estrujamiento por aplicación de un leve masaje cráneo-ventral entre las 23-24h desde la aplicación de la última inyección hormonal a 26,5Cº de temperatura, sin encontrar diferencias significativas (P>0,05) entre los tratamientos. Las hembras tratadas con Ovaprim® T3(0,05-0,5mL/kg), T4(0,07-0,7mL/kg) y T5(0,5mL/kg Ovaprim® - 0,05mL/kg EHC) no ovularon. Se encontraron diferencias significativas en la variable fecundidad reproductiva entre los tratamientos T2(497±270,1) y T6(1223±0,71) y porcentaje de fertilidad T1(25,5±7,8), T2(19,0±1,4) y T6(5,0±0,7). Estos resultados indican que el T6 con la mezcla (0,07mL/kg Ovaprim® - 7,0mg/kg EHC) presenta una fecundidad reproductiva de 1223±0,71 ovocitos, pero un porcentaje de fertilidad de 5,0±0,7 %. El T1 con EHC (0,5-5,0mL/kg) se obtuvo una fecundidad reproductiva de 624±36,8 ovocitos y un porcentaje de fertilidad de 25,5± 7,8 %. En conclusión el uso de inductores hormonales puede ser efectivo en la reproducción inducida de la cucha mariposa en condiciones de cautiverio, sugiriendo el extracto hipofisiario de carpa (EHC) como el inductor de primera opción para la especie.Capítulo 1. -- Informe final. -- Lista de figuras. -- Lista de tablas. – Resumen. – Abstract. -- Descripción del problema. – Hipótesis. – Objetivos. – Justificación. -- Marco teórico. -- Metodología y área de estudio. – Resultados. – Discusión. – Conclusiones. – Bibliografía. -- Capítulo 2. -- Artículo científico resultado de investigación.Trabajo de grado presentado como requisito para optar al título de Biólogo.PregradoBiólogo46 páginasapplication/pdfspaUniversidad de los LlanosFacultad de Ciencias Básicas e IngenieríaVillavicencioBiologíaSede BarcelonaDerechos Reservados - Universidad de los Llanos, 2018https://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/Atribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0)info:eu-repo/semantics/openAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2Evaluación del desempeño reproductivo de la cucha mariposa glyptoperichthys gibbiceps con diferentes inductores hormonalesTrabajo de grado - Pregradoinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesisinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionhttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fTexthttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85Proyectos de investigaciónArias CJA. 2002. Biología reproductiva y reproducción inducida de Brycon siebenthalae. Tesis de Doctorado Univ. Del Valle, Cali, Colombia. 112 p.Arias AJJ, Hernández RJL. 2009. Efectos del extracto hipofisiario de carpa común y el análogo de la GnRH sobre la maduración final del oocito y el desove de la cachama negra (Colossoma macropomum). Revista científica FCV-LUZ, 19(2): 486-494.Aya-Baquero E, Arias J. 2011. Reproducción inducida de Pimelodus pictus con extracto de hipófisis de carpa (EHC) y Ovaprim®. Rev.MVZ Córdoba, 16(1):2317-2323.Brzuska E, Adamek J. 1999. Artificial spawning of European catfish, Silurus glanis L.: stimulation of ovulation using LHRH-a, OVAPRIM® and carp pituitary extract. Aquaculture Research, 30: 59-64.Brzuska E. 2003. Artificial propagation of African catfish (Clarias gariepinus): differences between reproduction effects after stimulation of ovulation with carp pituitary homogenate or GnRH-a and dopaminergic inhibitor. Czech J. Anim. Sci, 48 (5): 181–190.Carrillo M, Zanuy S. 1993. Fisiología de la reproducción de los Teleósteos. En: “Acuicultura marina: fundamentos biológicos y tecnología de la producción”. Coord. F. Castelló Orvay. Ed. Universitat. Barcelona, p125-142.Collazos-Lasso L, Arias CJ. 2009. Estimulación a la maduración final y el desove de Ancistrus triradiatus. Rev. Orinoquia, 13(1):14-19.Contreras YA, Collazos LF. Aya E. 2017. Caracterización seminal de glyptoperichthys gibbiceps (pisces: loricaridae). (tesis de pregrado). Universidad de los Llanos, Villavicencio, Colombia.Cruz PE y Velasco YM. 2005. Determinación de las características seminales y seminación artificial en peces. Reproducción de peces en el trópico. INCODER. Bogotá (Colombia). 175-195p.Kah O, Anglade I, Leprétre E, Dubourg P, Monbrison D. 1993. The reproductive brain in fish. Fish Physiol. Biochem, 11(1-6): 85-98. En: Collazos LF, Arias JA. 2009. Estimulación a la maduración final y el desove de Ancistrus triradiatus. 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