Evaluación de aplicaciones cosméticas de extractos de las macroalgas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons con un enfoque en foto-protección, actividad antioxidante, anti-edad y agentes reológicos

Los países asiáticos China, Japón y Corea son los principales productores de algas marinas. Estos organismos son usados como fuente de biomasa para variedad de aplicaciones industriales que incluyen productos alimenticios, cosméticos y medicamentos. Colombia a pesar de ser un país bañado por dos océ...

Full description

Autores:: Rincón Valencia, Stefanie

Tipo de recurso:: Doctoral thesis

Fecha de publicación:: 2025

Institución:: Universidad de Antioquia

Repositorio:: Repositorio UdeA

Idioma:: spa

id	UDEA2_ae47e658b69c8aeb249795aba7f504d0
oai_identifier_str	oai:bibliotecadigital.udea.edu.co:10495/46000
network_acronym_str	UDEA2
network_name_str	Repositorio UdeA
repository_id_str
dc.title.spa.fl_str_mv	Evaluación de aplicaciones cosméticas de extractos de las macroalgas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons con un enfoque en foto-protección, actividad antioxidante, anti-edad y agentes reológicos
title	Evaluación de aplicaciones cosméticas de extractos de las macroalgas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons con un enfoque en foto-protección, actividad antioxidante, anti-edad y agentes reológicos
spellingShingle	Evaluación de aplicaciones cosméticas de extractos de las macroalgas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons con un enfoque en foto-protección, actividad antioxidante, anti-edad y agentes reológicos Envejecimiento - Prevención Aging - Prevention Factor de protección solar Sun protection factor Polisacáridos Polysaccharides Alga marina Seaweeds Citotoxicidad Cytotoxicity Propiedad antioxidante Antioxidant properties Extracto vegetal Plant extracts Gracilariopsis tenuifrons Sargssum filipendula http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_14154 http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_34251 https://agrovoc.fao.org/browse/agrovoc/es/page/c_11805097 http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_8166 http://id.loc.gov/authorities/subjects/sh98002534 https://id.nlm.nih.gov/mesh/D059405 https://id.nlm.nih.gov/mesh/D011134 ODS 14: Vida submarina. Conservar y utilizar sosteniblemente los océanos, los mares y los recursos marinos para el desarrollo sostenible
title_short	Evaluación de aplicaciones cosméticas de extractos de las macroalgas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons con un enfoque en foto-protección, actividad antioxidante, anti-edad y agentes reológicos
title_full	Evaluación de aplicaciones cosméticas de extractos de las macroalgas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons con un enfoque en foto-protección, actividad antioxidante, anti-edad y agentes reológicos
title_fullStr	Evaluación de aplicaciones cosméticas de extractos de las macroalgas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons con un enfoque en foto-protección, actividad antioxidante, anti-edad y agentes reológicos
title_full_unstemmed	Evaluación de aplicaciones cosméticas de extractos de las macroalgas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons con un enfoque en foto-protección, actividad antioxidante, anti-edad y agentes reológicos
title_sort	Evaluación de aplicaciones cosméticas de extractos de las macroalgas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons con un enfoque en foto-protección, actividad antioxidante, anti-edad y agentes reológicos
dc.creator.fl_str_mv	Rincón Valencia, Stefanie
dc.contributor.advisor.none.fl_str_mv	Restrepo Sánchez, Nora Eugenia Peláez Jaramillo, Carlos Alberto
dc.contributor.author.none.fl_str_mv	Rincón Valencia, Stefanie
dc.contributor.researchgroup.none.fl_str_mv	Grupo Interdisciplinario de Estudios Moleculares
dc.contributor.jury.none.fl_str_mv	Corena-McLeod, María del Pilar Castellanos Hernández, Leonardo
dc.subject.lcsh.none.fl_str_mv	Envejecimiento - Prevención Aging - Prevention
topic	Envejecimiento - Prevención Aging - Prevention Factor de protección solar Sun protection factor Polisacáridos Polysaccharides Alga marina Seaweeds Citotoxicidad Cytotoxicity Propiedad antioxidante Antioxidant properties Extracto vegetal Plant extracts Gracilariopsis tenuifrons Sargssum filipendula http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_14154 http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_34251 https://agrovoc.fao.org/browse/agrovoc/es/page/c_11805097 http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_8166 http://id.loc.gov/authorities/subjects/sh98002534 https://id.nlm.nih.gov/mesh/D059405 https://id.nlm.nih.gov/mesh/D011134 ODS 14: Vida submarina. Conservar y utilizar sosteniblemente los océanos, los mares y los recursos marinos para el desarrollo sostenible
dc.subject.decs.none.fl_str_mv	Factor de protección solar Sun protection factor Polisacáridos Polysaccharides
dc.subject.agrovoc.none.fl_str_mv	Alga marina Seaweeds Citotoxicidad Cytotoxicity Propiedad antioxidante Antioxidant properties Extracto vegetal Plant extracts
dc.subject.proposal.spa.fl_str_mv	Gracilariopsis tenuifrons Sargssum filipendula
dc.subject.agrovocuri.none.fl_str_mv	http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_14154 http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_34251 https://agrovoc.fao.org/browse/agrovoc/es/page/c_11805097 http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_8166
dc.subject.lcshuri.none.fl_str_mv	http://id.loc.gov/authorities/subjects/sh98002534
dc.subject.meshuri.none.fl_str_mv	https://id.nlm.nih.gov/mesh/D059405 https://id.nlm.nih.gov/mesh/D011134
dc.subject.ods.none.fl_str_mv	ODS 14: Vida submarina. Conservar y utilizar sosteniblemente los océanos, los mares y los recursos marinos para el desarrollo sostenible
description	Los países asiáticos China, Japón y Corea son los principales productores de algas marinas. Estos organismos son usados como fuente de biomasa para variedad de aplicaciones industriales que incluyen productos alimenticios, cosméticos y medicamentos. Colombia a pesar de ser un país bañado por dos océanos en donde encontramos una importante variedad de algas, este recurso marítimo no se aprovecha realmente en comparación con otros países incluso de la región como México, Venezuela y Panamá que han encontrado en las algas comestibles y en los ficocoloides provenientes de las mismas una oportunidad comercial. Para el desarrollo de esta tesis doctoral se evaluaron diferentes actividades relacionadas con aplicaciones cosméticas para extractos provenientes de macroalgas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons. Específicamente se obtuvo el SPF y λc in vitro de dos pre-formulados que contenían un 2% de cada uno de los extractos seleccionados para cada alga. Se encontró que para Sargassum filipendula el extracto que presentó mejores perfiles de absorbancia en el rango del UV correspondía al acuoso asistido con 1h de ultrasonido, con un porcentaje de extracción del 7.53 %, el SPF dio un valor de 1.75 y el λc de 373.167, mayor a 370 nm que es la longitud de onda crítica mínima establecida según la norma europea COLIPA para declarar que un producto fotoprotector es de amplio espectro. Mediante un análisis de espectroscopia de infrarrojo se logró asociar esta absorción en el UV con la presencia de grupos funcionales de tipo polifenólico. En ese mismo orden de ideas el extracto de Gracilariopsis tenuifrons que mostró unos mejores perfiles de absorción fue el que se obtuvo con la mezcla metanol: agua 50:50 con un porcentaje de extracción de 4.83%, el SPF dio un valor de 1 y el λc de 360 nm. En este caso la absorbancia fue asociada a la presencia de compuestos funcionales de la clase aminoácidos tipo micosporinas. Ambos extractos presentaron buenos perfiles de estabilidad con absorbancias remanentes en el UV incluso después de sometidos 24 horas a un simulador solar. Por otro lado, se determinó el contenido macromoléculas del tipo polisacáridos y se encontró que el alga Gracilariopsis tenuifrons presenta un notorio potencial para ser usado como fuente de este tipo de metabolitos de origen natural, en contraste con el Sargassum filipendula, ya que los porcentajes de extracción p/p (seco) de los extractos crudos fueron de 25.03 % y 0.152 % respectivamente. El polisacárido de Gracilariopsis tenuifrons mostró una buena capacidad de auto-ensamble con un tamaño de partícula de 349 nm con una distribución normal y un potencial Z de -31 mV según estudio con DLS. El análisis de viscosidad mostró que este extracto es capaz de modificar las propiedades reológicas en una solución acuosa. Al fraccionar el extracto rico en polisacáridos del alga Gracilariopsis tenuifrons se encontró que el tamaño de partícula de los polisacáridos está distribuido principalmente en polisacárido con un tamaño molecular mayor de 100 KDa (32.14% 100R) y menores de 10 KDa. (24.03% 3E y 35.06% 3R). Los polisacáridos con un tamaño mayor a 100KDa tenía la mayor cantidad de azúcares sulfatados con un porcentaje del 31.5%, una porción de azúcares ácidos de 6.3% y de azúcares neutros de 6.4%, convirtiendo esta fracción en un resultado atractivo en términos de rendimiento en la separación por microfiltración (32.14%) y su potencial para ser modificado por tratamientos químicos. La fracción colectada con tamaño entre 3 KDa y 10 KDa (3R) presenta un considerable contenido de azúcares sulfatados de 16.9 % y una menor cantidad de azúcares ácidos 5.8%, teniendo en cuenta estos resultados y el buen porcentaje de rendimiento en la separación (35.06%), esta fracción también es buen candidato para hacer modificaciones químicas en su estructura. Los espectros de resonancia magnética nuclear confirman que las fracciones 100R y 3R son altamente sulfatadas y ambas son polisacáridos del tipo κ -carragenanos. A los extractos con potencial foto-protector obtenidos de ambas algas, como al extracto rico en polisacárido del alga Gracilariopsis tenuifrons se le evaluó la capacidad antioxidante mediante las técnicas ABTS, ORAC, FRAP y determinación del contenido total de fenoles, además de su actividad anti-edad según la prueba de inhibición de colagenasa. Donde se encontró que el extracto acuoso de Sargassum filipendula fue el único que presentó una actividad importante en especial por la técnica ORAC con un valor 2783.1 µM Trolox /L Muestra que indica que este derivado es eficaz para neutralizar radicales peroxilo (ROO·), que son los principales radicales libres generados en procesos de oxidación biológica. Esto sugiere que el extracto podría proteger biomoléculas como lípidos, proteínas y ADN del daño oxidativo causado por estos radicales. Adicional a esto también dio una leve capacidad antioxidante por las metodologías ABTS (4086,3 µMol Trolox /Lmuestra) y FRAP (24.5 mg AA/Lmuestra). Con ninguna de las pruebas antioxidantes evaluadas los extractos del alga Gracilariopsis tenuifrons exhibieron una buena capacidad antioxidante. En el caso de el extracto obtenido a partir de la mezcla metanol:agua 50:50 las pruebas ABTS (275.3 µMol Trolox /Lmuestra), ORAC (199.7 µMol Trolox /Lmuestra) y FRAP (1.3 mg AA/Lmuestra) mostraron no tener buena capacidad antioxidante y su contenido de fenoles totales fue bajo 13.7 mg GAE/L muestra. En relación con el extracto rico en polisacárido de Gracilariopsis tenuifrons las pruebas ABTS y FRAP no reportaron actividad y la prueba ORAC dio un valor de 47.6 µM Trolox /L muestra considerado muy bajo, y el contenido de fenoles totales fue de sólo 1.7 mg GAE/L muestra. Para los tres extractos mencionados se evaluó el potencial cosmético para inhibir la enzima degradativa de colágeno. Donde se encontró que el extracto acuoso de Sargassum filipendula (445.01 μg/ml) y el extracto rico en polisacáridos de Gracilariopsis tenuifrons (827.39 μg/ml) exhibieron valores de IC50 del mismo orden que el control positivo EPG (199.84 μg/ml), lo que hace de estos dos extractos unos buenos candidatos para ser usados como ingrediente anti-envejecimiento según esta prueba in vitro, más aun teniendo en cuenta que estos son extractos crudos contrastados con el galato de epigalocatequina (EPG) que es un compuesto de alta pureza que se encuentra en el té verde y que tiene múltiples beneficios para la salud ya documentados como antioxidante, antiinflamatoria, incluyendo propiedades anti-colagenasa.1 Por otro lado el que extracto de metanol: agua 50:50 del alga Gracilariopsis tenuiforns (339779.24 µg/mL) dio un IC50 muy alto en comparación con el control positivo lo que indica que no hay buena actividad. La detección de metales en las dos algas, Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons reveló tanto metales tóxicos como esenciales. Para Sargassum filipendula, se detectaron niveles de arsénico (As) y cromo (Cr) que exceden los límites de seguridad para aplicaciones tópicas y consumibles. Por otro lado, también se determinó la presencia de metales esenciales como manganeso (Mn), níquel (Ni), zinc (Zn) y potasio (K). De estos el que más toxicidad presenta es el níquel por lo que sus niveles deben ser controlados ya que en concentraciones altas puede causar dermatitis de contacto. El manganeso es esencial, pero en altas concentraciones puede llegar a ser tóxico, mientras que, el zinc y el potasio no son considerados perjudiciales para la salud en usos tópicos. En el caso del alga Gracilariopsis tenuifrons se detectó plomo lo que también representa un riesgo para la salud, especialmente cuando se hacen aplicaciones repetidas de los productos. A su vez en el alga Gracilariopsis tenuifrons se encontró selenio (Se), manganeso, paladio (Pd), níquel (Ni), zinc (Zn) y potasio (K). Aunque el selenio es esencial, altas concentraciones pueden ser tóxicas, al igual que el manganeso y el paladio, los cuales deben ser monitoreados cuidadosamente debido a sus efectos adversos a altas concentraciones. La presencia de zinc y potasio es favorable para productos cosméticos, pero se debe garantizar que no alteren la seguridad del producto final. Para ambas biomasas se recomienda purificación para reducir estos metales a niveles seguros. En el último capítulo de esta tesis también se evaluó la citotoxicidad en fibroblastos con el fin de predecir el impacto que pueden tener los extractos en la piel y su biocompatibilidad, en caso de ser incluidos en una formulación cosmética. Este ensayo se hizo sobre la línea celular de fibroblastos T3T y se encontraron resultados diferentes para cada caso. Sargassum filipendula mostró producir una leve disminución de la viabilidad celular, la cual fue independiente de la concentración que puede estar dada por la presencia de metales tóxicos, el extracto de Gracilariopsis tenuifrons no tuvo ningún efecto citotóxico en ninguna de las concentraciones probadas y el extracto de Gracilariopsis tenuifrons rico en polisacáridos tuvo un efecto curioso ya que a partir de 0.5 mg/mL promovía la producción celular. Los resultados obtenidos en esta tesis demuestran el potencial de las macroalgas marinas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons, como fuentes valiosas de ingredientes para aplicaciones cosméticas, sin embargo, la presencia de metales tóxicos resalta la necesidad de una purificación adecuada antes de su uso en formulaciones.
publishDate	2025
dc.date.accessioned.none.fl_str_mv	2025-05-19T18:24:45Z
dc.date.issued.none.fl_str_mv	2025
dc.type.none.fl_str_mv	Trabajo de grado - Doctorado
dc.type.coar.none.fl_str_mv	http://purl.org/coar/resource_type/c_db06
dc.type.redcol.none.fl_str_mv	http://purl.org/redcol/resource_type/TD
dc.type.content.none.fl_str_mv	Text
dc.type.coarversion.none.fl_str_mv	http://purl.org/coar/version/c_b1a7d7d4d402bcce
dc.type.driver.none.fl_str_mv	info:eu-repo/semantics/doctoralThesis
dc.type.version.none.fl_str_mv	info:eu-repo/semantics/draft
format	http://purl.org/coar/resource_type/c_db06
status_str	draft
dc.identifier.uri.none.fl_str_mv	https://hdl.handle.net/10495/46000
url	https://hdl.handle.net/10495/46000
dc.language.iso.none.fl_str_mv	spa
language	spa
dc.relation.references.none.fl_str_mv	Payne A, Nahashon S, Taka E, Adinew GM, Soliman KFA. Epigallocatechin-3-Gallate (EGCG): New Therapeutic Perspectives for Neuroprotection, Aging, and Neuroinflammation for the Modern Age. Biomolecules. 2022;12(3). doi:10.3390/biom12030371 Martín AM. Biología de la piel y cancer. 2013:33. Mejía JC, Atehortúa L, Puertas MÁ. Foto-protección: Mecanismos bioquímicos, punto de partida hacia mejores filtros solares. Dermatologia Cosmet Medica y Quir. 2014;12(4):272-281. Jansen R, Osterwalder U, Wang SQ, Burnett M, Lim HW. Photoprotection: part II. Sunscreen: development, efficacy, and controversies. J Am Acad Dermatol. 2013;69(6):867.e1-867.e14. doi:10.1016/j.jaad.2013.08.022 Balakrishnan KP, Narayanaswamy N, Itc R, Industrial P, Phase A. Botanicals as sunscreens: Their role in the prevention of photoaging and skin cancer. Int J Res Cosmet Sci. 2011;1(1):13-16. Young AR, Claveau J, Rossi AB. Ultraviolet radiation and the skin: Photobiology and sunscreen photoprotection. J Am Acad Dermatol. 2017;76(3):S100-S109. doi:10.1016/j.jaad.2016.09.038 Jansen R, Wang SQ, Burnett M, Osterwalder U, Lim HW. Photoprotection: Part I. Photoprotection by naturally occurring, physical, and systemic agents. J Am Acad Dermatol. 2013;69(6):853.e1-853.e12. doi:10.1016/j.jaad.2013.08.021 Mancebo SE, Hu JY, Wang SQ. Sunscreens: A review of health benefits, regulations, and controversies. Dermatol Clin. 2014;32(3):427-438. doi:10.1016/j.det.2014.03.011 Gilbert E, Pirot F, Bertholle V, Roussel L, Falson F, Padois K. Commonly used UV filter toxicity on biological functions: Review of last decade studies. Int J Cosmet Sci. 2013;35(3):208-219. doi:10.1111/ics.12030 Lim HW, Arellano-Mendoza M-I, Stengel F. Current challenges in photoprotection. J Am Acad Dermatol. 2017;76(3S1):S91-S99. doi:10.1016/j.jaad.2016.09.040 Yeager DG, Lim HW. What’s New in Photoprotection: A Review of New Concepts and Controversies. Dermatol Clin. 2019;37(2):149-157. doi:10.1016/j.det.2018.11.003 Ziegler CB· C. Cell Aging: Molecular Mechanisms and Implications for Disease.; 2014. Bosch R, Philips N, Suárez-Pérez J, et al. Mechanisms of Photoaging and Cutaneous Photocarcinogenesis, and Photoprotective Strategies with Phytochemicals. Antioxidants. 2015;4(2):248-268. doi:10.3390/antiox4020248 Kozina LS, Borzova I V, Arutiunov VA, Ryzhak GA. Role of Oxidative Stress in Skin Aging. 2013;3(1):18-22. doi:10.1134/S2079057013010086 Poon F, Kang S, Chien AL. Mechanisms and treatments of photoaging. Photodermatol Photoimmunol Photomed. 2015;31(2):65-74. doi:10.1111/phpp.12145 Kai FB, Drain AP, Weaver VM. The Extracellular Matrix Modulates the Metastatic Journey. Dev Cell. 2019;49(3):332-346. doi:10.1016/j.devcel.2019.03.026 Nikitovic D, Corsini E, Kouretas D, Tsatsakis A, Tzanakakis G. ROS-major mediators of extracellular matrix remodeling during tumor progression. Food Chem Toxicol. 2013;61:178-186. doi:10.1016/j.fct.2013.06.013 Aurélie Le Pagea, Abdelouahed Khalila, Patrick Vermette, Eric H. Frostc, Anis Larbi JMW and TF. The role of elastin-derived peptides in human physiology and diseases Aurélie. Elseviern Matrix Biol. 2019;84:81-96. V.S Krishnamurthy Chennubhotla MUAM and KSR. Exploitation of marine algae in Indo-Pacific region. Seaweed ResUtiln. 2013;35:1-7. Cardozo KHM, Guaratini T, Barros MP, et al. Metabolites from algae with economical impact. Comp Biochem Physiol - C Toxicol Pharmacol. 2007;146(1-2 SPEC. ISS.):60-78. doi:10.1016/j.cbpc.2006.05.007 Wijesinghe WAJP, Jeon YJ. Biological activities and potential industrial applications of fucose rich sulfated polysaccharides and fucoidans isolated from brown seaweeds: A review. Carbohydr Polym. 2012;88(1):13-20. doi:10.1016/j.carbpol.2011.12.029 Kim SK, Pangestuti R. Potential Role of Marine Algae on Female Health, Beauty, and Longevity. Vol 64. 1st ed. Elsevier Inc.; 2011. doi:10.1016/B978-0-12-387669-0.00004-1 Senevirathne WSM, Kim SK. Cosmeceuticals from Algae. Woodhead Publishing Limited; 2013. doi:10.1533/9780857098689.4.694 Wang HMD, Chen CC, Huynh P, Chang JS. Exploring the potential of using algae in cosmetics. Bioresour Technol. 2015;184:355-362. doi:10.1016/j.biortech.2014.12.001 Lalegerie F, Lajili S, Bedoux G, Taupin L, Stiger-pouvreau V, Connan S. Photo-protective compounds in red macroalgae from Brittany: Considerable diversity in mycosporine-like amino acids (MAAs). Mar Environ Res. 2019;147(April):37-48. doi:10.1016/j.marenvres.2019.04.001 de Almeida CLF, Falcão H de S, Lima GR d. M, et al. Bioactivities from marine algae of the genus Gracilaria. Int J Mol Sci. 2011;12(7):4550-4573. doi:10.3390/ijms12074550 Senni K, Pereira J, Gueniche F, et al. Marine polysaccharides: A source of bioactive molecules for cell therapy and tissue engineering. Mar Drugs. 2011;9(9):1664-1681. doi:10.3390/md9091664 Khotimchenko M, Tiasto V, Kalitnik A, et al. Antitumor potential of carrageenans from marine red algae. Carbohydr Polym. 2020;246(February):116568. doi:10.1016/j.carbpol.2020.116568 Kuznetsova TA, Andryukov BG, Besednova NN, Zaporozhets TS, Kalinin A V. Marine algae polysaccharides as basis for wound dressings, drug delivery, and tissue engineering: A review. J Mar Sci Eng. 2020;8(7). doi:10.3390/JMSE8070481 Hans N, Malik A, Naik S. Antiviral activity of sulfated polysaccharides from marine algae and its application in combating COVID-19: Mini review. Bioresour Technol Reports. 2021;13(December 2020):100623. doi:10.1016/j.biteb.2020.100623 Ahmadi A, Zorofchian Moghadamtousi S, Abubakar S, Zandi K. Antiviral potential of algae polysaccharides isolated from marine sources: A review. Biomed Res Int. 2015;2015. doi:10.1155/2015/825203 Costa LS, Fidelis GP, Cordeiro SL, et al. Biological activities of sulfated polysaccharides from tropical seaweeds. Biomed Pharmacother. 2010;64(1):21-28. doi:10.1016/j.biopha.2009.03.005 Wang HMD, Chen CC, Huynh P, Chang JS. Exploring the potential of using algae in cosmetics. Bioresour Technol. 2015;184:355-362. doi:10.1016/j.biortech.2014.12.001 Thiyagarasaiyar K, Goh B, Jeon Y. Algae Metabolites in Cosmeceutical : An Overview of Current Applications and Challenges. Berthon J, Nachat-kappes R, Bey M, Cadoret J, Renimel I, Filaire E. Marine algae as attractive source to skin care. 2017;5762. doi:10.1080/10715762.2017.1355550 Berthon JY, Nachat-Kappes R, Bey M, Cadoret JP, Renimel I, Filaire E. Marine algae as attractive source to skin care. Free Radic Res. 2017;51(6):555-567. doi:10.1080/10715762.2017.1355550 Ryu J, Park SJ, Kim IH, Choi YH, Nam TJ. Protective effect of porphyra-334 on UVA-induced photoaging in human skin fibroblasts. Int J Mol Med. 2014;34(3):796-803. doi:10.3892/ijmm.2014.1815 Łęska B, Messyasz B, Schroeder G. Application of Algae Biomass and Algae Extracts in Cosmetic Formulations. Algae Biomass Charact Appl. 2018;(May 2017):89-101. doi:10.1007/978-3-319-74703-3_8 Liu T, Li N, Yan Y qi, et al. Recent advances in the anti-aging effects of phytoestrogens on collagen, water content, and oxidative stress. Phyther Res. 2020;34(3):435-447. doi:10.1002/ptr.6538 Prasad KN, Wu M, Bondy SC. Telomere shortening during aging: Attenuation by antioxidants and anti-inflammatory agents. Mech Ageing Dev. 2017;164:61-66. doi:10.1016/j.mad.2017.04.004 Sataloff RT, Johns MM, Kost KM. Handbook of Microalgae-Based Processes and Products.; 2020. Priyan Shanura Fernando I, Kim KN, Kim D, Jeon YJ. Algal polysaccharides: potential bioactive substances for cosmeceutical applications. Crit Rev Biotechnol. 2019;39(1):99-113. doi:10.1080/07388551.2018.1503995 Zubia M, Freile-Pelegrín Y, Robledo D. Photosynthesis, pigment composition and antioxidant defences in the red alga Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariales, Rhodophyta) under environmental stress. J Appl Phycol. 2014;26(5):2001-2010. doi:10.1007/s10811-014-0325-3 Bouzon ZL, Schmidt EC, Almeida AC de, Yokoya NS, Oliveira MC de, Chow F. Cytochemical characterization and ultrastructural organization in calluses of the agarophyte Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariales, Rhodophyta). Micron. 2011;42(1):80-86. doi:10.1016/j.micron.2010.07.012 Carneiro MA do A, Resende JF de J, Oliveira SR, et al. Performance of the agarophyte Gracilariopsis tenuifrons in a multi-trophic aquaculture system with Litopenaeus vannamei using water recirculation. J Appl Phycol. 2021;33(1):481-490. doi:10.1007/s10811-020-02318-7 Barrios J, Lemus A. Estructura y dinámica de comunidades asociadas a cultivos de Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariaceae) en Chacopata, Sucre, Venezuela. I: Inventario faunístico. Rev Biol Trop. 2000;48(1 SUPPL. 1):137-143. Rincones, Raúl E. Moreno DA. Aspectos técnicos y económicos para el establecimiento comenciañ de maricultivo de algas en Colombia: Experiencias en la Península de la Guajira. Ambient y Desarro. 2011;15(28). Propiedades físicas del agar de Gracilariopsis tenuifrons Gracila. Marimuthu J. Phytochemical characterization of brown seaweed Sargassum wightii. 2012. doi:10.1016/S2222-1808(12)60134-0 Devault DA, Pierre R, Marfaing H, Dolique F, Lopez P. Sargassum contamination and consequences for downstream uses : a review. 2021:567-602. Rodrigues Silva JI, De Melo Ferreira AC, Da Costa ACA. Uranium biosorption under dynamic conditions: Preliminary tests with Sargassum filipendula in real radioactive wastewater containing Ba, Cr, Fe, Mn, Pb, Ca and Mg. J Radioanal Nucl Chem. 2009;279(3):909-914. doi:10.1007/s10967-008-7366-5 Nascimento Júnior WJ, Silva MGC, Vieira MGA. Competitive fixed-bed biosorption of Ag(I) and Cu(II) ions on Sargassum filipendula seaweed waste. J Water Process Eng. 2020;36(April). doi:10.1016/j.jwpe.2020.101294 Moino BP, Costa CSD, Carlos da Silva MG, Vieira MGA. Reuse of the alginate extraction waste from Sargassum filipendula for Ni(II) biosorption. Chem Eng Commun. 2020;207(1):17-30. doi:10.1080/00986445.2018.1564909 Luna AS, Costa ALH, da Costa ACA, Henriques CA. Competitive biosorption of cadmium(II) and zinc(II) ions from binary systems by Sargassum filipendula. Bioresour Technol. 2010;101(14):5104-5111. doi:10.1016/j.biortech.2010.01.138 Cardoso SL, Costa CSD, Nishikawa E, da Silva MGC, Vieira MGA. Biosorption of toxic metals using the alginate extraction residue from the brown algae Sargassum filipendula as a natural ion-exchanger. J Clean Prod. 2017;165:491-499. doi:10.1016/j.jclepro.2017.07.114 Bertagnolli C, da Silva MGC, Guibal E. Chromium biosorption using the residue of alginate extraction from Sargassum filipendula. Chem Eng J. 2014;237:362-371. doi:10.1016/j.cej.2013.10.024 Bertagnolli C, Espindola APDM, Kleinübing SJ, Tasic L, Silva MGC Da. Sargassum filipendula alginate from Brazil: Seasonal influence and characteristics. Carbohydr Polym. 2014;111:619-623. doi:10.1016/j.carbpol.2014.05.024 Series C. Fucoidan Content from Brown Seaweed ( Sargassum filipendula ) And Its Potential As Radical Scavenger Fucoidan Content from Brown Seaweed ( Sargassum filipendula ) And Its Potential As Radical Scavenger. 2020. Sierra-Vélez L, Álvarez-León R. Bromatological Comparison of Native (Gracilariopsis Tenuifrons, Sargassum Filipendula) and Exotic Algae (Kappaphycus Alvarezii) of the Colombian Caribbean Sea. Bol Cient Cent Museos Mus Hist Nat. 2009;13(2):17-25. Costa LS, Fidelis GP, Telles CBS, et al. Antioxidant and antiproliferative activities of heterofucans from the seaweed Sargassum filipendula. Mar Drugs. 2011;9(6):952-966. doi:10.3390/md9060952 Telles CBS, Mendes-Aguiar C, Fidelis GP, et al. Immunomodulatory effects and antimicrobial activity of heterofucans from Sargassum filipendula. J Appl Phycol. 2018;30(1):569-578. doi:10.1007/s10811-017-1218-z Seebode C, Lehmann J, Emmert S. Photocarcinogenesis and Skin Cancer Prevention Strategies. Anticancer Res. 2016;36(3):1371-1378. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26977038. Narayanan DL, Saladi RN, Fox JL. Review: Ultraviolet radiation and skin cancer. Int J Dermatol. 2010;49(9):978-986. doi:10.1111/j.1365-4632.2010.04474.x D’Orazio J, Jarrett S, Amaro-Ortiz A, Scott T. UV radiation and the skin. Int J Mol Sci. 2013;14(6):12222-12248. doi:10.3390/ijms140612222 Maslin DL. Do suncreens protect us? Int J Dermatol. 2014;53(11):1319-1323. doi:10.1111/ijd.12606 Dupont E, Gomez J, Bilodeau D. Beyond UV radiation: A skin under challenge. Int J Cosmet Sci. 2013;35(3):224-232. doi:10.1111/ics.12036 Juan P, Mejía C. Radiación solar UltraVioleta , efectos nocivos y Mecanismos naturales de fotoprotección. (3). Gilaberte Y, Coscojuela C, Carmen M, Santamaría S De, González S. Fotoprotección. 2015;94(5):271-293. Gimier LP. Actualización de mecanismos moleculares cutáneos. III. Acido urocánico y cosmética. Offarm Farm y Soc. 2002;21:8-10. http://europa.sim.ucm.es/compludoc/AA?articuloId=180784. Cole C. Sunscreens - what is the ideal testing model? Photodermatol Photoimmunol Photomed. 2014;30(2-3):81-87. doi:10.1111/phpp.12095 Kaur a, Thatai P, Sapra B. Need of UV protection and evaluation of efficacy of sunscreens. J Cosmet Sci. 2014;65(5):315-345. Moyal D, Alard V, Bertin C, et al. The revised COLIPA in vitro UVA method. Int J Cosmet Sci. 2013;35(1):35-40. doi:10.1111/j.1468-2494.2012.00748.x Kumar S, Baweja P, Sahoo D. Diatoms: Yellow or Golden Brown Algae.; 2015. doi:10.1007/978-94-017-7321-8_8 Radulovich R, Umanzor S. Algas Tropicales Cultivo y Uso Como Alimento 2013 (Tropical Seaweeds: Cultivation and Use as Food) Aquatic Agriculture: Cultivating Floating Crops on Lakes View Project Giant Kelp Restoration in Baja California, Mexico View Project. Vol 2013.; 2013. https://www.researchgate.net/publication/272168650. Rastogi RP, Sonani RR, Madamwar D. UV Photoprotectants From Algae-Synthesis and Bio-Functionalities. Algal Green Chem Recent Prog Biotechnol. 2017:17-38. doi:10.1016/B978-0-444-63784-0.00002-3 Hartmann A, Holzinger A, Ganzera M, Karsten U. Prasiolin, a new UV-sunscreen compound in the terrestrial green macroalga Prasiola calophylla (Carmichael ex Greville) Kützing (Trebouxiophyceae, Chlorophyta). Planta. 2016;243(1):161-169. doi:10.1007/s00425-015-2396-z Dionisio-Sese ML. Aquatic microalgae as potential sources of UV-screening compounds. Philipp J Sci. 2010;139(1):5-16. Conde FR, Churio MS, Previtali CM. The photoprotector mechanism of mycosporine-like amino acids. Excited-state properties and photostability of porphyra-334 in aqueous solution. J Photochem Photobiol B Biol. 2000;56(2-3):139-144. doi:10.1016/S1011-1344(00)00066-X Tosato MG, Orallo DE, Fangio MF, Diz V DL and CM. 3Nanomaterials and natural products for UV-photoprotection. In: Surface Chemistry of Nanobiomaterials. ; 2016. https://doi.org/10.1016/B978-0-323-42861-3.00012-1. Whitehead K, Hedges JI. Photodegradation and photosensitization of mycosporine-like amino acids. J Photochem Photobiol B Biol. 2005;80(2):115-121. doi:10.1016/j.jphotobiol.2005.03.008 Bajpai R, Prokop A, Zappi M. Algal biorefineries: Volume 1: Cultivation of cells and products. Algal Biorefineries Vol 1 Cultiv Cells Prod. 2014:1-324. doi:10.1007/978-94-007-7494-0 Hoyer K, Karsten U, Wiencke C. Induction of sunscreen compounds in Antarctic macroalgae by different radiation conditions. Mar Biol. 2002;141(4):619-627. doi:10.1007/s00227-002-0871-0 Zhaohui Z, Xin G, Tashiro Y, Matsukawa S, Ogawa H. The isolation of prophyra-334 from marine algae and its UV-absorption behavior. Chinese J Oceanol Limnol. 2005;23(4):400-405. doi:10.1007/bf02842683 Mobin SMA, Chowdhury H, Alam F. Commercially important bioproducts from microalgae and their current applications-A review. Energy Procedia. 2019;160(2018):752-760. doi:10.1016/j.egypro.2019.02.183 Wijesekara I, Kim SK, Li Y, Li YX. Phlorotannins as bioactive agents from brown algae. Process Biochem. 2011;46(12):2219-2224. doi:10.1016/j.procbio.2011.09.015 Berthon JY, Nachat-Kappes R, Bey M, Cadoret JP, Renimel I, Filaire E. Marine algae as attractive source to skin care. Free Radic Res. 2017;51(6):555-567. doi:10.1080/10715762.2017.1355550 Karsten U. Defense strategies of algae and cyanobacteria against solar ultraviolet radiation. Algal Chem Ecol. 2008;9783540741:273-296. doi:10.1007/978-3-540-74181-7_13 Ariede MB, Candido TM, Jacome ALM, Velasco MVR, de Carvalho JCM, Baby AR. Cosmetic attributes of algae - A review. Algal Res. 2017;25(May):483-487. doi:10.1016/j.algal.2017.05.019 Le Lann K, Surget G, Couteau C, et al. Sunscreen, antioxidant, and bactericide capacities of phlorotannins from the brown macroalga Halidrys siliquosa. J Appl Phycol. 2016;28(6):3547-3559. doi:10.1007/s10811-016-0853-0 Copia J, Gaete H, Zúñiga G, Hidalgo M, Cabrera E. Efecto de la radiación ultravioleta B en la producción de polifenoles en la microalga marina Chlorella sp . Effect of ultraviolet B radiation on the production of polyphenols in the marine microalga Chlorella sp . 2012;40(1):113-123. doi:10.3856/vol40-issue1-fulltext-11 Jesumani V et al. Potential Use of Seaweed Bioactive Compounds in Skincare—A Review.pdf. 2019. Schmitz C, Ramlov F, de Lucena LAF, et al. UVR and PAR absorbing compounds of marine brown macroalgae along a latitudinal gradient of the Brazilian coast. J Photochem Photobiol B Biol. 2018;178(May 2017):165-174. doi:10.1016/j.jphotobiol.2017.10.029 Andersson M, Schubert H, Pedersén M, Snoeijs P. Different patterns of carotenoid composition and photosynthesis acclimation in two tropical red algae. Mar Biol. 2006;149(3):653-665. doi:10.1007/s00227-005-0174-3 Lena G Di, Casini I, Lucarini M, Lombardi-boccia G. Carotenoid profiling of five microalgae species from large-scale production. Food Res Int. 2019;120(November 2018):810-818. doi:10.1016/j.foodres.2018.11.043 Ch MAR. GAZETTE. XLI(3 Population studies in Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariales, Rhodophyta)- physiological and molecular approaches.pdf. Sierra-v L, Guajira L. Comparación bromatológica de las algas nativas (Gracilariopsus tenuifrons, Sargassum filipendula) y exóticas (Kappaphycus Alvarezii) del caribe Colombiano. Boletín Científico Mus Hist Nat. 2009;1:6-14. Brito L., Silva S. Fenología y ciclo de vida del alga Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariaceae) en Sucre, Venezuela Leonor. J Trop Biol. 2005;53(1):67-73. Torres PB, Chow F, Ferreira MJP, dos Santos DYAC. Mycosporine-like amino acids from Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariales, Rhodophyta) and its variation under high light. J Appl Phycol. 2016;28(3):2035-2040. doi:10.1007/s10811-015-0708-0 Montgomery D. Diseño y Análisis de Experimentos.; 2004. Of A. H Andbook of E Nvironmental. Chemat F, Zill-e-Huma, Khan MK. Applications of ultrasound in food technology: Processing, preservation and extraction. Ultrason Sonochem. 2011;18(4):813-835. doi:10.1016/j.ultsonch.2010.11.023 Luque-García JL, Luque De Castro MD. Ultrasound: A powerful tool for leaching. TrAC - Trends Anal Chem. 2003;22(1):41-47. doi:10.1016/S0165-9936(03)00102-X Newman DJ, Cragg GM. Natural Products as. J Nat Prod. 2012;75(3):311-335. doi:10.1021/np200906s.Natural Hartmann A, Murauer A, Ganzera M. Quantitative analysis of mycosporine-like amino acids in marine algae by capillary electrophoresis with diode-array detection. J Pharm Biomed Anal. 2017;138:153-157. doi:10.1016/j.jpba.2017.01.053 Min-Sup Lee,† Taisun Shin,‡ Tadanobu Utsuki,§ Jae-Sue Choi,† Dae-Seok Byun † and Hyeung-Rak Kim. Isolation and Identification of Phlorotannins from Ecklonia stolonifera with Antioxidant and Hepatoprotective Properties in Tacrine-Treated HepG2 Cells. J Agric Food Chem. 2012:5340−5349. Zou Y, Qian ZJ, Li Y, Kim MM, Lee SH, Kim SK. Antioxidant effects of phlorotannins isolated from Ishige okamurae in free radical mediated oxidative systems. J Agric Food Chem. 2008;56(16):7001-7009. doi:10.1021/jf801133h YONG LI,†,‡ SANG-HOON LEE,§ QUANG-TO LE M-MK, AND, SE-KWON KIM †. Anti-allergic Effects of Phlorotannins on Histamine Release via Binding Inhibition between IgE and FcεRI. J Agric Food Chem. 2008;56:12073–12080. NA YOUNG YOON,† TAE-KIL EOM M-MK, AND SE-KWON KIM,† ‡. Inhibitory Effect of Phlorotannins Isolated from Ecklonia cava on Mushroom Tyrosinase Activity and Melanin Formation in Mouse B16F10 Melanoma Cells. J Agric Food Chem. 2009;57:4124–4129. T Wang,,†,‡,§,# Rósa Jónsdóttir,‡ Haiyan Liu,⊥ Liwei Gu HGK, Sivakumar Raghavan and GO. Antioxidant Capacities of Phlorotannins Extracted from the Brown Algae Fucus vesiculosus. J Agric Food Chem. 2012;60:5874−5883. A-REUM KIM,† TAI-SUN SHIN,‡MIN-SUP LEE,† JI-YOUNG PARK K-EP, NA-YOUNG YOON,† JONG-SOON KIM,† JAE-SUE CHOI B-CJ, DAE-SEOK BYUN N-KP, AND HYEUNG-RAK KIM*. Isolation and Identification of Phlorotannins from Ecklonia stolonifera with Antioxidant and Anti-inflammatory Properties. J Agric Food Chem. 2009;57:3483–3489. Karsten U, Hoyer K. MYCOSPORINE-LIKE AMINO ACIDS AND PHYLOGENIES IN GREEN ALGAE : PRASIOLA AND ITS RELATIVES FROM THE TREBOUXIOPHYCEAE ( CHLOROPHYTA ) 1 Thomas Friedl Rhena Schumann and Sebastian Lembcke. 2005;566:557-566. doi:10.1111/j.1529-8817.2005.00081.x Coba F De, Aguilera J, Figueroa FL. Antioxidant activity of mycosporine-like amino acids isolated from three red macroalgae and one marine lichen. 2009:161-169. doi:10.1007/s10811-008-9345-1 quing-Wen Zhang L-GL and W-C ye. Techniques for extraction and isolation of natural producks: a comprenhensive review.pdf. 2018:16. Lucena SC and R. Recent advaces in extraction and stirring integrated techniques.pdf. 2017. Urbach F. The historical aspects of sunscreens. J Photochem Photobiol B Biol. 2001;64(2-3):99-104. doi:10.1016/S1011-1344(01)00202-0 Schneider G, Figueroa FL, Vega J, et al. Photoprotection properties of marine photosynthetic organisms grown in high ultraviolet exposure areas: Cosmeceutical applications. Algal Res. 2020;49. doi:10.1016/j.algal.2020.101956 Roldán DL. Prueba estadística ANOVA y Tukey. Prueba estadística ANOVA y Tukey. Grande DT. ANOVA with Games-Howell Post Hoc Test in SPSS. ANOVA with Games-Howell Post Hoc Test in SPSS. Peter Statistics. Analysing a nominal and scale variable. Part 3b: Post-hoc test. https://peterstatistics.com/CrashCourse/3-TwoVarUnpair/NomScale/NomScale3b.html. Fundamentals of Ultrasound Assisted Extraction.pdf. Rodríguez Sánchez RA, Canelón DJ, Cosenza VA, et al. Gracilariopsis hommersandii, a red seaweed, source of agar and sulfated polysaccharides with unusual structures. Carbohydr Polym. 2019;213:138-146. doi:10.1016/j.carbpol.2019.02.071 Usov AI. Polysaccharides of the Red Algae. Vol 65. 1st ed. Elsevier Inc.; 2011. doi:10.1016/B978-0-12-385520-6.00004-2 Usov AI, Bilan MI, Klochkova NG. Polysaccharides of Algae 48. Polysaccharide Composition of Several Calcareous Red Algae: Isolation of Alginate from Corallina pilulifera P. et R. (Rhodophyta, Corallinaceae). Bot Mar. 1995;38(1-6):43-52. doi:10.1515/botm.1995.38.1-6.43 Chemat F, Vian MA, Cravotto G. Green extraction of natural products: Concept and principles. Int J Mol Sci. 2012;13(7):8615-8627. doi:10.3390/ijms13078615 Azmir J, Zaidul ISM, Rahman MM, et al. Techniques for extraction of bioactive compounds from plant materials: A review. J Food Eng. 2013;117(4):426-436. doi:10.1016/j.jfoodeng.2013.01.014 Wen C, Zhang J, Zhang H, et al. Advances in ultrasound assisted extraction of bioactive compounds from cash crops – A review. Ultrason Sonochem. 2018;48:538-549. doi:10.1016/j.ultsonch.2018.07.018 Ultrasound- A clean, green extraction technology.pdf. Barel AO, Paye M, Maibach HI. Handbook of cosmetic science and technology. Handb Cosmet Sci Technol Third Ed. 2009:1-890. doi:10.1001/archderm.138.9.1262-a Ghimire P, Chandra Shrestha A, Pandey S. Guidelines on Stability Studies of Pharmaceutical Products and Shelf Life Estimation. Int J Adv Pharm Biotechnol. 2020;6(1):15-23. doi:10.38111/ijapb.20200601004 Luna-Pérez Y, Ríos-López LG, Otero-Tejada EL, Mejía-Giraldo JC, Puertas-Mejía MÁ. Sargassum filipendula, a Source of Bioactive Compounds with Antioxidant and Matrix Metalloproteinases Inhibition Activities In Vitro with Potential Dermocosmetic Application. Antioxidants. 2023;12(4). doi:10.3390/antiox12040876 Mycosporine-like amino acids from Gracilariopsis tenuifrons.pdf. Resende DISP, Jesus A, Sousa Lobo JM, et al. Up-to-Date Overview of the Use of Natural Ingredients in Sunscreens. Pharmaceuticals. 2022;15(3). doi:10.3390/ph15030372 Ahsan H. The significance of complex polysaccharides in personal care formulations. J Carbohydr Chem. 2019;38(4):213-233. doi:10.1080/07328303.2019.1615498 Priyan Shanura Fernando I, Kim KN, Kim D, Jeon YJ. Algal polysaccharides: potential bioactive substances for cosmeceutical applications. Crit Rev Biotechnol. 2019;39(1):99-113. doi:10.1080/07388551.2018.1503995 Miranda V, Fimbres D, Miranda Anselmo, et al. Microalgas Marinas: Una Fuente Valiosa de Polisacáridos con Propiedades Bioactivas y Funcionales. Rev Uninson. 2023;18(1):1-15. https://invurnus.unison.mx/index.php/INVURNUS/article/view/91/68. Kim IH, Lee JH. Antimicrobial activities against methicillin-resistant Staphylococcus aureus from macroalgae. J Ind Eng Chem. 2008;14(5):568-572. doi:10.1016/j.jiec.2008.04.004 Manivasagan P, Oh J. Marine polysaccharide-based nanomaterials as a novel source of nanobiotechnological applications. Int J Biol Macromol. 2016;82:315-327. doi:10.1016/j.ijbiomac.2015.10.081 Usman A, Khalid S, Usman A, Hussain Z, Wang Y. Algal Polysaccharides, Novel Application, and Outlook. Algae Based Polym Blends, Compos Chem Biotechnol Mater Sci. 2017:115-153. doi:10.1016/B978-0-12-812360-7.00005-7 Skoler-Karpoff S, Ramjee G, Ahmed K, et al. Efficacy of Carraguard for prevention of HIV infection in women in South Africa: a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet. 2008;372(9654):1977-1987. doi:10.1016/S0140-6736(08)61842-5 Do BC, Dang TT, Berrin JG, et al. Cloning, expression in Pichia pastoris, and characterization of a thermostable GH5 mannan endo-1,4-beta-mannosidase from Aspergillus niger BK01. Microb Cell Fact. 2009;8:59. doi:10.1021/ac60111a017 Li J, Kisara K, Danielsson S, Lindström ME, Gellerstedt G. An improved methodology for the quantification of uronic acid units in xylans and other polysaccharides. Carbohydr Res. 2007;342(11):1442-1449. doi:10.1016/j.carres.2007.03.031 Dubois M, Gilles KA, Hamilton JK, Rebers PA, Smith F. Colorimetric Method for Determination of Sugars and Related Substances. Anal Chem. 1956;28(3):350-356. doi:10.1021/ac60111a017 Farndale RW, Buttle DJ, Barrett AJ. Improved quantitation and discrimination of sulphated glycosaminoglycans by use of dimethylmethylene blue. BBA - Gen Subj. 1986;883(2):173-177. doi:10.1016/0304-4165(86)90306-5 Whltley CB, Draper KA, Dutton CM, Neglia JP. DiagnosticTest for Mucopolysaccharidosis . I . Direct Method for QuantifyingExcessive Urinary GlycosaminoglycanExcretion. 1989;35(3):374-379. Turnbull JE, Gallagher JT. Oligosaccharide mapping of heparan sulphate by polyacrylamide-gradient-gel electrophoresis and electrotransfer to nylon membrane. Biochem J. 1988;251(2):597-608. doi:10.1042/bj2510597 Bertagnolli C, Espindola APDM, Kleinübing SJ, Tasic L, Silva MGC Da. Sargassum filipendula alginate from Brazil: Seasonal influence and characteristics. Carbohydr Polym. 2014;111:619-623. doi:10.1016/j.carbpol.2014.05.024 Jiménez L. Aprovechamiento del alga marina Sargassum spp. mediantedigestión anaerobia y tratamiento en medio ácido. 2020. https://repositorio.cinvestav.mx/bitstream/handle/cinvestav/3396/SSIT0016645.pdf?sequence=1. Zecchinel F. E, Brito L. L, Lárez E. G. Propiedades físicas del agar de Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariaceae) en Sucre, Venezuela. Rev Biol Trop. 2000;48(1 SUPPL. 1):193-197. Gupta D, Martinez DC, Puertas-Mejía MA, Hearnden VL, Reilly GC. The Effects of Fucoidan Derived from Sargassum filipendula and Fucus vesiculosus on the Survival and Mineralisation of Osteogenic Progenitors. Int J Mol Sci. 2024;25(4). doi:10.3390/ijms25042085 Rodrigues D, Freitas AC, Pereira L, et al. Chemical composition of red, brown and green macroalgae from Buarcos bay in Central West Coast of Portugal. Food Chem. 2015;183:197-207. doi:10.1016/j.foodchem.2015.03.057 Hu X, Goff HD. Fractionation of polysaccharides by gradient non-solvent precipitation: A review. Trends Food Sci Technol. 2018;81:108-115. doi:10.1016/j.tifs.2018.09.011 Vidal S, Williams P, Doco T, Moutounet M, Pellerin P. The polysaccharides of red wine: Total fractionation and characterization. Carbohydr Polym. 2003;54(4):439-447. doi:10.1016/S0144-8617(03)00152-8 Wang J, Zhang Q, Zhang Z, Li Z. Antioxidant activity of sulfated polysaccharide fractions extracted from Laminaria japonica. Int J Biol Macromol. 2008;42(2):127-132. doi:10.1016/j.ijbiomac.2007.10.003 Yao HYY, Wang JQ, Yin JY, Nie SP, Xie MY. A review of NMR analysis in polysaccharide structure and conformation: Progress, challenge and perspective. Food Res Int. 2021;143. doi:10.1016/j.foodres.2021.110290 Usov AI. NMR Spectroscopy of Red Seaweed Polysaccharides: Agars, Carrageenans, and Xylans. Bot Mar. 1984;27(5):189-202. doi:10.1515/botm.1984.27.5.189 Campo VL, Kawano DF, Silva DB da, Carvalho I. Carrageenans: Biological properties, chemical modifications and structural analysis - A review. Carbohydr Polym. 2009;77(2):167-180. doi:10.1016/j.carbpol.2009.01.020 Youssouf L, Lallemand L, Giraud P, et al. Ultrasound-assisted extraction and structural characterization by NMR of alginates and carrageenans from seaweeds. Carbohydr Polym. 2017;166:55-63. doi:10.1016/j.carbpol.2017.01.041 Amatu A, Imberti R. Oxidative Stress in Applied Basic Research and Clinical Practice - Studies on Experimental Models. Vol 56.; 2012. doi:10.4081/ejh.2012.br9 Lephart ED. Skin aging and oxidative stress : Equol ’ s anti-aging effects via biochemical and molecular mechanisms. Ageing Res Rev. 2016;31:36-54. doi:10.1016/j.arr.2016.08.001 Mukherjee PK, Bahadur S, Chaudhary SK, Harwansh RK, Nema NK. Validation of Medicinal Herbs for Skin Aging. Elsevier Inc.; 2015. doi:10.1016/B978-0-12-800874-4.00005-2 Sant’Anna Addor FA. Beyond photoaging: additional factors involved in the process of skin aging. Clin Cosmet Investig Dermatology. 2018;11:437-443. doi:10.2147/CCID.S177448 Thring TSA, Hili P, Naughton DP. Anti-collagenase, anti-elastase and anti-oxidant activities of extracts from 21 plants. BMC Complement Altern Med. 2009;9:1-11. doi:10.1186/1472-6882-9-27 Han A, Chien AL, Kang S. Photoaging. Dermatol Clin. 2014;32(3):291-299. doi:10.1016/j.det.2014.03.015 Tobin DJ. Introduction to skin aging. J Tissue Viability. 2017;26(1):37-46. doi:10.1016/j.jtv.2016.03.002 Gragnani A, Cornick S Mac, Chominski V, Ribeiro de Noronha SM, Alves Corrêa de Noronha SA, Ferreira LM. Review of Major Theories of Skin Aging. Adv Aging Res. 2014;03(04):265-284. doi:10.4236/aar.2014.34036 J. Charles G. Jeynes, Kalotina Geraki, Christopher Jeynes, Mi Zhaohong,∥ Andrew A. Bettiol,∥ Eva Latorre,⊥ Lorna Wendy Harries and CS. Nanoscale Properties of Human Telomeres Measured with a Dual Purpose X‑ray Fluorescence and Super Resolution Microscopy Gold Nanoparticle Probe.pdf. 2017. Takumi Ishizuka, an Xu and MK, †Research. A Chemistry-Based Method To Detect Individual Telomere Length at a Single Chromosome Terminus. 2013. Neil R. Lloyd, Thayne H. Dickey,† Robert A. Hom and DSW. Tying up the Ends: Plasticity in the Recognition of Single-Stranded DNA at Telomeres. 2016. Prasad KN, Wu M, Bondy SC. Telomere shortening during aging: Attenuation by antioxidants and anti-inflammatory agents. Mech Ageing Dev. 2017;164(April):61-66. doi:10.1016/j.mad.2017.04.004 Babbar M, Basu S, Yang B, Croteau DL, Bohr VA. Mitophagy and DNA damage signaling in human aging. Mech Ageing Dev. 2020;186(January):111207. doi:10.1016/j.mad.2020.111207 Tiwari V, Wilson DM. DNA Damage and Associated DNA Repair Defects in Disease and Premature Aging. Am J Hum Genet. 2019;105(2):237-257. doi:10.1016/j.ajhg.2019.06.005 gildelvalle2015.pdf. Gilchrest BA. Skin aging and photoaging. Dermatology Nurs / Dermatology Nurses" Assoc. 1990;2(2):79-82. doi:10.1088/978-1-6270-5455-3ch1 Serravallo M, Jagdeo J, Glick SA, Siegel DM, Brody NI. Sirtuins in dermatology: Applications for future research and therapeutics. Arch Dermatol Res. 2013;305(4):269-282. doi:10.1007/s00403-013-1320-2 annurev-biochem-060815-014537.pdf. Huang JY, Hirschey MD, Shimazu T, Ho L, Verdin E. Mitochondrial sirtuins. Biochim Biophys Acta - Proteins Proteomics. 2010;1804(8):1645-1651. doi:10.1016/j.bbapap.2009.12.021 Hepel M, Andreescu S. Oxidative Stress and Human Health. 2015;2. Gupta DK, Palma JM, Corpas FJ. Reactive oxygen species and oxidative damage in plants under stress. React Oxyg Species Oxidative Damage Plants Under Stress. 2015:1-370. doi:10.1007/978-3-319-20421-5 Hsieh HY, Lee WC, Senadi GC, et al. Discovery, synthetic methodology, and biological evaluation for antiphotoaging activity of bicyclic[1,2,3]triazoles: In vitro and in vivo studies. J Med Chem. 2013;56(13):5422-5435. doi:10.1021/jm400394s Glasauer A, Chandel NS. Do you have any strong views on journals and the peer review system? Curbio. 2013;23(3):R100-R102. doi:10.1016/j.cub.2012.12.011 Apak R, Özyürek M, Güçlü K, Çapanoʇlu E. Antioxidant activity/capacity measurement. 3. Reactive oxygen and nitrogen species (ROS/RNS) scavenging assays, oxidative stress biomarkers, and chromatographic/chemometric assays. J Agric Food Chem. 2016;64(5):1046-1070. doi:10.1021/acs.jafc.5b04744 Apak R, Özyürek M, Güçlü K, Çapanoʇlu E. Antioxidant Activity/Capacity Measurement. 2. Hydrogen Atom Transfer (HAT)-Based, Mixed-Mode (Electron Transfer (ET)/HAT), and Lipid Peroxidation Assays. J Agric Food Chem. 2016;64(5):1028-1045. doi:10.1021/acs.jafc.5b04743 Kuznetsov A V., Kehrer I, Kozlov A V., et al. Mitochondrial ROS production under cellular stress: Comparison of different detection methods. Anal Bioanal Chem. 2011;400(8):2383-2390. doi:10.1007/s00216-011-4764-2 acs.chemrev.8b00626.pdf. Diebold L, Chandel NS. Mitochondrial ROS regulation of proliferating cells. Free Radic Biol Med. 2016;100:86-93. doi:10.1016/j.freeradbiomed.2016.04.198 Mittler R. ROS Are Good. Trends Plant Sci. 2017;22(1):11-19. doi:10.1016/j.tplants.2016.08.002 Khan SB, Kong CS, Kim JA, Kim SK. Protective effect of amphiroa dilatata on ROS induced oxidative damage and MMP expressions in HT1080 cells. Biotechnol Bioprocess Eng. 2010;15(1):191-198. doi:10.1007/s12257-009-0052-9 acsbiomaterials.6b00250.pdf. Maxwell C. McCabea, Ryan C. Hill, Kenneth Calderoneb, Yilei Cui, Yan Yan, Taihao Quan GJF and KCH. Alterations in extracellular matrix composition during aging and photoaging of the skin. elsevier MBPLUS. 2020. doi:https://doi.org/10.1016/j.mbplus.2020.100041 ijms-17-00868-v2.pdf. Addor FAS. Beyond photoaging: Additional factors involved in the process of skin aging. Clin Cosmet Investig Dermatol. 2018;11:437-443. doi:10.2147/CCID.S177448 Amorati R, Valgimigli L. Methods To Measure the Antioxidant Activity of Phytochemicals and Plant Extracts. 2018:1-6. doi:10.1021/acs.jafc.8b01079 Biomedical M. The Inhibitory Effects of Eckol and Dieckol from Ecklonia stolonifera on the Expression of Matrix Metalloproteinase-1 in Human Dermal. 2006;29(August):8-12. Murthy KNC, Vanitha A, Rajesha J, Swamy MM, Sowmya PR, Ravishankar GA. In vivo antioxidant activity of carotenoids from Dunaliella salina — a green microalga. 2005;76:1381-1390. doi:10.1016/j.lfs.2004.10.015 Wu H, Fu X, Cao W, Xiang W, Hou Y, Ma J. Induction of Apoptosis in Human Glioma Cells by Fucoxanthin via Triggering of ROS-Mediated Oxidative Damage and Regulation of MAPKs and PI3K − AKT Pathways. 2019. doi:10.1021/acs.jafc.8b07126 Filomena M, Raposo DJ, Maria A, Morais B De, Manuel R, Costa S. Marine Polysaccharides from Algae with Potential Biomedical Applications. 2015:2967-3028. doi:10.3390/md13052967 Olmo A, Picon A, Nuñez M. High pressure processing for the extension of Laminaria ochroleuca ( kombu ) shelf-life : A comparative study with seaweed salting and freezing. Innov Food Sci Emerg Technol. 2019;52(November 2018):420-428. doi:10.1016/j.ifset.2019.02.007 Zhang Z, Wang F, Wang X, Liu X, Hou Y, Zhang Q. Extraction of the polysaccharides from five algae and their potential antioxidant activity in vitro. Carbohydr Polym. 2010;82(1):118-121. doi:10.1016/j.carbpol.2010.04.031 Wang HD, Li X, Lee D, Chang J. Potential biomedical applications of marine algae. Bioresour Technol. 2017;(May). doi:10.1016/j.biortech.2017.05.198 Silva J, Alves C, Freitas R, et al. Antioxidant and Neuroprotective Potential of the Brown Seaweed Bifurcaria bifurcata in an in vitro Parkinson ’ s Disease Model. :1-16. doi:10.3390/md17020085 Airanthi MKW, Hosokawa M, Miyashita K. Comparative Antioxidant Activity of Edible Japanese Brown Seaweeds. 2011;76(1). doi:10.1111/j.1750-3841.2010.01915.x Messina CM, Renda G, Laudicella VA, et al. From Ecology to Biotechnology , Study of the Defense Strategies of Algae and Halophytes ( from Trapani Saltworks , NW Sicily ) with a Focus on Antioxidants and Antimicrobial Properties. doi:10.3390/ijms20040881 Kang KAH, Lee KHWA, Chae S, et al. Triphlorethol-A from Ecklonia cava protects V79-4 lung fibroblast against hydrogen peroxide induced cell damage. 2005;39(August):883-892. doi:10.1080/10715760500161165 Yan X. YCMS y TN. Fucoxantin as the mayor antioxidant in Hijikia fusiformis a common edible seaweed. 1998. Rankel EDNF. How To Standardize the Multiplicity of Methods To. 2008:4901-4908. ABTS FRAP y Fenoles totales Actividad antioxidante y contenido de fenoles totales de algunas especies del género Calophyllum.pdf. Goiris K, Muylaert K, Fraeye I, Foubert I, De Brabanter J, De Cooman L. Antioxidant potential of microalgae in relation to their phenolic and carotenoid content. J Appl Phycol. 2012;24(6):1477-1486. doi:10.1007/s10811-012-9804-6 Dang TT, Bowyer MC, Van Altena IA, Scarlett CJ. Comparison of chemical profile and antioxidant properties of the brown algae. Int J Food Sci Technol. 2018;53(1):174-181. doi:10.1111/ijfs.13571 Capacidad atrapadora de radicales oxígeno (ORAC) y fenoles totales de frutas y hortalizas de Colombia \| Perspectivas en Nutrición Humana. https://revistas.udea.edu.co/index.php/nutricion/article/view/20310. Park JJ, Lee WY. Anti-glycation effects of brown algae extracts and its phenolic compounds. Food Biosci. 2021;41. doi:10.1016/j.fbio.2021.101042 Wang HD, Chen C, Huynh P, Chang J. Bioresource Technology Exploring the potential of using algae in cosmetics. Bioresour Technol. 2015;184:355-362. doi:10.1016/j.biortech.2014.12.001 Talero E, García-mauriño S, Ávila-román J, Rodríguez-luna A, Alcaide A, Motilva V. Bioactive Compounds Isolated from Microalgae in Chronic Inflammation and Cancer. 2015:6152-6209. doi:10.3390/md13106152 Saidani K, Bedjou F, Benabdesselam F, Touati N. Antifungal activity of methanolic extracts of four Algerian marine algae species. 2012;11(39):9496-9500. doi:10.5897/AJB11.1537 Peng J, Yuan J, Wu C, Wang J. Fucoxanthin , a Marine Carotenoid Present in Brown Seaweeds and Diatoms : Metabolism and Bioactivities Relevant to Human Health. 2011:1806-1828. doi:10.3390/md9101806 Biotechnol M, Hwang E, Park S, Sun Z. The Protective Effects of Fucosterol Against Skin Damage in UVB-Irradiated Human Dermal Fibroblasts. 2013. doi:10.1007/s10126-013-9554-8 Thomas NV, Kim S. Beneficial Effects of Marine Algal Compounds in Cosmeceuticals. 2013:146-164. doi:10.3390/md11010146 Shibata T, Fujimoto K, Nagayama K, Yamaguchi K, Nakamura T. Inhibitory activity of brown algal phlorotannins against hyaluronidase. 2002;(1989):703-709. Oon NAYOY, Om TAEILE, Im MOONOOK, Im SEWONK. Inhibitory Effect of Phlorotannins Isolated from Ecklonia cava on Mushroom Tyrosinase Activity and Melanin Formation in Mouse B16F10 Melanoma Cells. 2009:4124-4129. doi:10.1021/jf900006f Samarakoon W, Lee WW, Kim H, et al. A fucoidan fraction purified from Chnoospora minima ; a potential inhibitor of LPS-induced inflammatory responses. Int J Biol Macromol. 2017. doi:10.1016/j.ijbiomac.2017.07.031 Safety assessment of personal care products/cosmetics and their ingredients \| Elsevier Enhanced Reader. https://reader.elsevier.com/reader/sd/pii/S0041008X09005018?token=303161A1C6C7396CAF9E7C7EF6EA87825B0A3613A0023A3FB4491C49A1E6489879E0480F67978EB4BD2AFAF47DB65D7F&originRegion=us-east-1&originCreation=20210916234704. Papadopoulos A, Assimomytis N, Varvaresou A. Sample Preparation of Cosmetic Products for the Determination of Heavy Metals. Cosmetics. 2022;9(1). doi:10.3390/cosmetics9010021 Heavy Metals and Human Health- Possible Exposure Pathways and the Competition for Protein Binding Sites.pdf. Witkowska D, Słowik J, Chilicka K. Review heavy metals and human health: Possible exposure pathways and the competition for protein binding sites. Molecules. 2021;26(19). doi:10.3390/molecules26196060 Olusola JA, Akintan OB, Erhenhi HA, Osanyinlusi OO. Heavy Metals and Health Risks Associated with Consumption of Herbal Plants Sold in a Major Urban Market in Southwest, Nigeria. J Heal Pollut. 2021;11(31):1-11. doi:10.5696/2156-9614-11.31.210915 Paithankar JG, Saini S, Dwivedi S, Sharma A, Chowdhuri DK. Heavy metal associated health hazards: An interplay of oxidative stress and signal transduction. Chemosphere. 2021;262. doi:10.1016/j.chemosphere.2020.128350 Essential metals in health and disease - 1-s2.0-S0009279722003787-main.pdf. Olusola JA, Akintan OB, Erhenhi HA, Osanyinlusi OO. Heavy Metals and Health Risks Associated with Consumption of Herbal Plants Sold in a Major Urban Market in Southwest, Nigeria. J Heal Pollut. 2021;11(31):1-11. doi:10.5696/2156-9614-11.31.210915 Bertagnolli C, Gurgel M, Guibal E. Chromium biosorption using the residue of alginate extraction from Sargassum filipendula. 2013. Coelho CM, de Andrade JR, da Silva MGC, Vieira MGA. Removal of propranolol hydrochloride by batch biosorption using remaining biomass of alginate extraction from Sargassum filipendula algae. Environ Sci Pollut Res. 2020;27(14):16599-16611. doi:10.1007/s11356-020-08109-4 Cardoso SL, Moino BP, Costa CSD, Da Silva MGC, Vieira MGA. Evaluation of metal affinity of Ag+, Cd2+, Cr3+, Cu2+, Ni2+, Zn2+ and Pb2+ in residue of double alginate extraction from Sargassum filipendula seaweed. Chem Eng Trans. 2016;52:1027-1032. doi:10.3303/CET1652172 Kleinübing, Sirlei Jaiana. Silviera Viera, Rodrigo. Masumi. Beppu M. Characterizatión and Evaluation of Copper and Nickel Biosorption on Acidic Sargassum filipendula. Mater Res. 2010;3:430-439. Kleinübing SJ, Vieira RS, Beppu MM, Guibal E, Da Silva MGC. Characterization and evaluation of copper and nickel biosorption on acidic algae Sargassum filipendula. Mater Res. 2010;13(4):541-550. doi:10.1590/S1516-14392010000400018 Mohs RC, Greig NH. Drug discovery and development : Role of basic biological research. Alzheimer’s Dement Transl Res Clin Interv. 2017;(November):1-7. doi:10.1016/j.trci.2017.10.005 Bahuguna A, Khan I, Bajpai VK, Kang SC. MTT assay to evaluate the cytotoxic potential of a drug. 2017:115-118. doi:10.3329/bjp.v12i2.30892 Driskell RR, Lichtenberger BM, Hoste E, et al. architecture in skin development and repair. Nature. 2014;504(7479):277-281. doi:10.1038/nature12783 Lynch MD, Watt FM. Fibroblast heterogeneity : implications for human disease. 2018;128(1). Leibiger C, Kosyakova N, Mkrtchyan H, Glei M, Liehr T. First Molecular Cytogenetic High Resolution Characterization of the NIH 3T3 Cell Line by Murine Multicolor Banding. 2013. doi:10.1369/0022155413476868 Tolosa L, Donato MT, Gómez-lechón MJ. Chapter 26 General Cytotoxicity Assessment by Means of the MTT Assay. 2015;1250:333-348. doi:10.1007/978-1-4939-2074-7 Kumar P, Nagarajan A, Uchil PD. Analysis of Cell Viability by the MTT Assay. 2018:469-472. doi:10.1101/pdb.prot095505 chromium-compounds.pdf. Benson L, Reczek KK. A guide to United States cosmetic products compliance requirements. 2021. https://nvlpubs.nist.gov/nistpubs/ir/2021/NIST.IR.8178r1.pdf. Rev:1- Revisions indicated with a vertical line in the left margin. WHO:SDE:WSH:03.04:75:Rev:1 Arsenic in Drinking-water.pdf. Smedley PL, Kinniburgh DG. A review of the source, behaviour and distribution of arsenic in natural waters. Appl Geochemistry. 2002;17(5):517-568. doi:10.1016/S0883-2927(02)00018-5 Mohan D, Pittman CU. Activated carbons and low cost adsorbents for remediation of tri- and hexavalent chromium from water. J Hazard Mater. 2006;137(2):762-811. doi:10.1016/j.jhazmat.2006.06.060 FDA. Supporting document for recommended maximum lead level in cosmetic lip products and externally applied cosmetics. Docket No FDA-2014-D-2275. 2016:1-14. Al-Khafaji Z, Brito S, Bin BH. Zinc and Zinc Transporters in Dermatology. Int J Mol Sci. 2022;23(24). doi:10.3390/ijms232416165 (CONTAM) EP on C in the FC, Schrenk D, Bignami M, et al. Update of the risk assessment of nickel in food and drinking water. EFSA J. 2020;18(11):e06268. Selenium in Drinking-water.pdf. Section DW. Manganese in. 1971;7359:475-481. contact sromatitis and dermatitis to nickel and palladium.pdf. Hinds C, Oxenford H, Cumberbatch J, Fardin F, Cashman A. Golden Tides: Management Best Practices for Influxes of Sragassum in the Caribbean with a focus on clean-up. Cent Resour Manag Environ Stud. 2016:17 pp. https://www.cavehill.uwi.edu/principal/getattachment/17762/Sargassum-Management-Brief.pdf.aspx. Milledge JJ, Harvey PJ. Golden Tides: Problem or golden opportunity? The valorisation of Sargassum from beach inundations. J Mar Sci Eng. 2016;4(3). doi:10.3390/jmse4030060 Montoya Rosas E, Carlos Lira G&. Usos Y Aplicaciones De Las Macroalgas Marinas: Una Revisión. Bol Inst Ocean Venez. 2017;56(2):89-101. Melgarejo LM, Sánchez J, Chaparro A, et al. Aproximación al estado actual de la bioprospección en Colombia. 2002:334. Shibata T, Fujimoto K, Nagayama K, Yamaguchi K, Nakamura T. Inhibitory activity of brown algal phlorotannins against hyaluronidase. Int J Food Sci Technol. 2002;37(6):703-709. doi:10.1046/j.1365-2621.2002.00603.x Pande J, Dhanki A, Padalia H, Chanda S. Pharmacognostic characterization, phytochemical and physicochemical evaluation of Sargassum wightii and Padina gymnospora, two brown seaweeds from Gujarat coast. Pharma Innov J. 2018;7(6):78-86. www.thepharmajournal.com.
dc.rights.uri.none.fl_str_mv	http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/
dc.rights.accessrights.none.fl_str_mv	info:eu-repo/semantics/openAccess
dc.rights.license.en.fl_str_mv	Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International
dc.rights.coar.none.fl_str_mv	http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
rights_invalid_str_mv	http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
eu_rights_str_mv	openAccess
dc.format.extent.none.fl_str_mv	169 páginas
dc.format.mimetype.none.fl_str_mv	application/pdf
dc.coverage.box.none.fl_str_mv	Lat: 04 00 00 N degrees minutes Lat: 4.0000 decimal degrees Long: 072 00 00 W degrees minutes Long: -72.0000 decimal degrees
dc.coverage.tgn.none.fl_str_mv	http://vocab.getty.edu/page/tgn/1000050
dc.coverage.country.none.fl_str_mv	Colombia
dc.publisher.none.fl_str_mv	Universidad de Antioquia
dc.publisher.program.none.fl_str_mv	Doctorado en Ciencias Químicas
dc.publisher.department.none.fl_str_mv	Instituto de Química
dc.publisher.place.none.fl_str_mv	Medellín, Colombia
dc.publisher.faculty.none.fl_str_mv	Facultad de Ciencias Exactas y Naturales
dc.publisher.branch.none.fl_str_mv	Campus Medellín - Ciudad Universitaria
publisher.none.fl_str_mv	Universidad de Antioquia
institution	Universidad de Antioquia
bitstream.url.fl_str_mv	https://bibliotecadigital.udea.edu.co/bitstreams/800f8fce-76fd-4629-a450-030abfeb1586/download https://bibliotecadigital.udea.edu.co/bitstreams/c72a30b2-fbd6-4444-9fd4-496cf4826816/download https://bibliotecadigital.udea.edu.co/bitstreams/b3c8c0cf-fb17-4bfa-99dd-ed4189076c33/download https://bibliotecadigital.udea.edu.co/bitstreams/88450c2e-e04c-44ac-bb02-7098b8ad0f82/download https://bibliotecadigital.udea.edu.co/bitstreams/1bee07d3-bbe5-4d87-a556-5d255d98369b/download
bitstream.checksum.fl_str_mv	64a5fc3144ed80f7c21cd616a94669d6 b76e7a76e24cf2f94b3ce0ae5ed275d0 5643bfd9bcf29d560eeec56d584edaa9 269a0b76916a2991de0000faa571293c a8f9947e1a20d44a7c6d33c5f91ea947
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv	MD5 MD5 MD5 MD5 MD5
repository.name.fl_str_mv	Repositorio Institucional de la Universidad de Antioquia
repository.mail.fl_str_mv	aplicacionbibliotecadigitalbiblioteca@udea.edu.co
_version_	1851052626450317312
spelling	Restrepo Sánchez, Nora EugeniaPeláez Jaramillo, Carlos AlbertoRincón Valencia, StefanieGrupo Interdisciplinario de Estudios MolecularesCorena-McLeod, María del PilarCastellanos Hernández, Leonardo2025-05-19T18:24:45Z2025https://hdl.handle.net/10495/46000Los países asiáticos China, Japón y Corea son los principales productores de algas marinas. Estos organismos son usados como fuente de biomasa para variedad de aplicaciones industriales que incluyen productos alimenticios, cosméticos y medicamentos. Colombia a pesar de ser un país bañado por dos océanos en donde encontramos una importante variedad de algas, este recurso marítimo no se aprovecha realmente en comparación con otros países incluso de la región como México, Venezuela y Panamá que han encontrado en las algas comestibles y en los ficocoloides provenientes de las mismas una oportunidad comercial. Para el desarrollo de esta tesis doctoral se evaluaron diferentes actividades relacionadas con aplicaciones cosméticas para extractos provenientes de macroalgas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons. Específicamente se obtuvo el SPF y λc in vitro de dos pre-formulados que contenían un 2% de cada uno de los extractos seleccionados para cada alga. Se encontró que para Sargassum filipendula el extracto que presentó mejores perfiles de absorbancia en el rango del UV correspondía al acuoso asistido con 1h de ultrasonido, con un porcentaje de extracción del 7.53 %, el SPF dio un valor de 1.75 y el λc de 373.167, mayor a 370 nm que es la longitud de onda crítica mínima establecida según la norma europea COLIPA para declarar que un producto fotoprotector es de amplio espectro. Mediante un análisis de espectroscopia de infrarrojo se logró asociar esta absorción en el UV con la presencia de grupos funcionales de tipo polifenólico. En ese mismo orden de ideas el extracto de Gracilariopsis tenuifrons que mostró unos mejores perfiles de absorción fue el que se obtuvo con la mezcla metanol: agua 50:50 con un porcentaje de extracción de 4.83%, el SPF dio un valor de 1 y el λc de 360 nm. En este caso la absorbancia fue asociada a la presencia de compuestos funcionales de la clase aminoácidos tipo micosporinas. Ambos extractos presentaron buenos perfiles de estabilidad con absorbancias remanentes en el UV incluso después de sometidos 24 horas a un simulador solar. Por otro lado, se determinó el contenido macromoléculas del tipo polisacáridos y se encontró que el alga Gracilariopsis tenuifrons presenta un notorio potencial para ser usado como fuente de este tipo de metabolitos de origen natural, en contraste con el Sargassum filipendula, ya que los porcentajes de extracción p/p (seco) de los extractos crudos fueron de 25.03 % y 0.152 % respectivamente. El polisacárido de Gracilariopsis tenuifrons mostró una buena capacidad de auto-ensamble con un tamaño de partícula de 349 nm con una distribución normal y un potencial Z de -31 mV según estudio con DLS. El análisis de viscosidad mostró que este extracto es capaz de modificar las propiedades reológicas en una solución acuosa. Al fraccionar el extracto rico en polisacáridos del alga Gracilariopsis tenuifrons se encontró que el tamaño de partícula de los polisacáridos está distribuido principalmente en polisacárido con un tamaño molecular mayor de 100 KDa (32.14% 100R) y menores de 10 KDa. (24.03% 3E y 35.06% 3R). Los polisacáridos con un tamaño mayor a 100KDa tenía la mayor cantidad de azúcares sulfatados con un porcentaje del 31.5%, una porción de azúcares ácidos de 6.3% y de azúcares neutros de 6.4%, convirtiendo esta fracción en un resultado atractivo en términos de rendimiento en la separación por microfiltración (32.14%) y su potencial para ser modificado por tratamientos químicos. La fracción colectada con tamaño entre 3 KDa y 10 KDa (3R) presenta un considerable contenido de azúcares sulfatados de 16.9 % y una menor cantidad de azúcares ácidos 5.8%, teniendo en cuenta estos resultados y el buen porcentaje de rendimiento en la separación (35.06%), esta fracción también es buen candidato para hacer modificaciones químicas en su estructura. Los espectros de resonancia magnética nuclear confirman que las fracciones 100R y 3R son altamente sulfatadas y ambas son polisacáridos del tipo κ -carragenanos. A los extractos con potencial foto-protector obtenidos de ambas algas, como al extracto rico en polisacárido del alga Gracilariopsis tenuifrons se le evaluó la capacidad antioxidante mediante las técnicas ABTS, ORAC, FRAP y determinación del contenido total de fenoles, además de su actividad anti-edad según la prueba de inhibición de colagenasa. Donde se encontró que el extracto acuoso de Sargassum filipendula fue el único que presentó una actividad importante en especial por la técnica ORAC con un valor 2783.1 µM Trolox /L Muestra que indica que este derivado es eficaz para neutralizar radicales peroxilo (ROO·), que son los principales radicales libres generados en procesos de oxidación biológica. Esto sugiere que el extracto podría proteger biomoléculas como lípidos, proteínas y ADN del daño oxidativo causado por estos radicales. Adicional a esto también dio una leve capacidad antioxidante por las metodologías ABTS (4086,3 µMol Trolox /Lmuestra) y FRAP (24.5 mg AA/Lmuestra). Con ninguna de las pruebas antioxidantes evaluadas los extractos del alga Gracilariopsis tenuifrons exhibieron una buena capacidad antioxidante. En el caso de el extracto obtenido a partir de la mezcla metanol:agua 50:50 las pruebas ABTS (275.3 µMol Trolox /Lmuestra), ORAC (199.7 µMol Trolox /Lmuestra) y FRAP (1.3 mg AA/Lmuestra) mostraron no tener buena capacidad antioxidante y su contenido de fenoles totales fue bajo 13.7 mg GAE/L muestra. En relación con el extracto rico en polisacárido de Gracilariopsis tenuifrons las pruebas ABTS y FRAP no reportaron actividad y la prueba ORAC dio un valor de 47.6 µM Trolox /L muestra considerado muy bajo, y el contenido de fenoles totales fue de sólo 1.7 mg GAE/L muestra. Para los tres extractos mencionados se evaluó el potencial cosmético para inhibir la enzima degradativa de colágeno. Donde se encontró que el extracto acuoso de Sargassum filipendula (445.01 μg/ml) y el extracto rico en polisacáridos de Gracilariopsis tenuifrons (827.39 μg/ml) exhibieron valores de IC50 del mismo orden que el control positivo EPG (199.84 μg/ml), lo que hace de estos dos extractos unos buenos candidatos para ser usados como ingrediente anti-envejecimiento según esta prueba in vitro, más aun teniendo en cuenta que estos son extractos crudos contrastados con el galato de epigalocatequina (EPG) que es un compuesto de alta pureza que se encuentra en el té verde y que tiene múltiples beneficios para la salud ya documentados como antioxidante, antiinflamatoria, incluyendo propiedades anti-colagenasa.1 Por otro lado el que extracto de metanol: agua 50:50 del alga Gracilariopsis tenuiforns (339779.24 µg/mL) dio un IC50 muy alto en comparación con el control positivo lo que indica que no hay buena actividad. La detección de metales en las dos algas, Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons reveló tanto metales tóxicos como esenciales. Para Sargassum filipendula, se detectaron niveles de arsénico (As) y cromo (Cr) que exceden los límites de seguridad para aplicaciones tópicas y consumibles. Por otro lado, también se determinó la presencia de metales esenciales como manganeso (Mn), níquel (Ni), zinc (Zn) y potasio (K). De estos el que más toxicidad presenta es el níquel por lo que sus niveles deben ser controlados ya que en concentraciones altas puede causar dermatitis de contacto. El manganeso es esencial, pero en altas concentraciones puede llegar a ser tóxico, mientras que, el zinc y el potasio no son considerados perjudiciales para la salud en usos tópicos. En el caso del alga Gracilariopsis tenuifrons se detectó plomo lo que también representa un riesgo para la salud, especialmente cuando se hacen aplicaciones repetidas de los productos. A su vez en el alga Gracilariopsis tenuifrons se encontró selenio (Se), manganeso, paladio (Pd), níquel (Ni), zinc (Zn) y potasio (K). Aunque el selenio es esencial, altas concentraciones pueden ser tóxicas, al igual que el manganeso y el paladio, los cuales deben ser monitoreados cuidadosamente debido a sus efectos adversos a altas concentraciones. La presencia de zinc y potasio es favorable para productos cosméticos, pero se debe garantizar que no alteren la seguridad del producto final. Para ambas biomasas se recomienda purificación para reducir estos metales a niveles seguros. En el último capítulo de esta tesis también se evaluó la citotoxicidad en fibroblastos con el fin de predecir el impacto que pueden tener los extractos en la piel y su biocompatibilidad, en caso de ser incluidos en una formulación cosmética. Este ensayo se hizo sobre la línea celular de fibroblastos T3T y se encontraron resultados diferentes para cada caso. Sargassum filipendula mostró producir una leve disminución de la viabilidad celular, la cual fue independiente de la concentración que puede estar dada por la presencia de metales tóxicos, el extracto de Gracilariopsis tenuifrons no tuvo ningún efecto citotóxico en ninguna de las concentraciones probadas y el extracto de Gracilariopsis tenuifrons rico en polisacáridos tuvo un efecto curioso ya que a partir de 0.5 mg/mL promovía la producción celular. Los resultados obtenidos en esta tesis demuestran el potencial de las macroalgas marinas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons, como fuentes valiosas de ingredientes para aplicaciones cosméticas, sin embargo, la presencia de metales tóxicos resalta la necesidad de una purificación adecuada antes de su uso en formulaciones.RESUMEN 6 TABLA DE CONTENIDO 9 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA. 12 HIPÓTESIS. 17 CAPÍTULO 1 18 1. Exploración del potencial foto-protector de compuestos bioactivos de las macroalgas del caribe colombiano Gracilariopsis tenuifrons y Sargassum filipendula. 18 1.1. ESTADO DEL ARTE. 18 1.1.1. LA PIEL Y LOS EFECTOS DE LA RADIACIÓN SOLAR SOBRE ELLA. 18 Radiación ultravioleta 19 Visible 21 Infrarrojo 21 1.1.2. FOTOPROTECCIÓN. 22 Endógena 22 Exógena 22 1.1.3. DESARROLLO DE LOS FOTOPROTECTORES Y EVALUACIÓN DE SU EFECTIVIDAD. 24 1.1.4. GENERALIDADES DE LAS ALGAS Y SU APROVECHAMIENTO EN FOTOPROTECCIÓN. 26 Aminoácidos tipo micosporina. 27 Florotaninos. 28 Carotenoides. 29 1.2. OBJETIVOS. 32 1.3. MATERIALES Y MÉTODOS. 33 1.3.1. Obtención y Preparación del Material Biológico (MB). 33 1.3.2. Ensayo comprensivo inicial de la extracción del material biológico. 33 1.3.3. Coeficiente de Absorción Relativo en el UV . 34 1.3.4. Porcentaje de Rendimiento. 34 1.3.5. Optimización de la Extracción. 34 1.3.6. Análisis estadístico de los datos del ensayo comprensivo inicial de la extracción. 35 1.3.7. Evaluación de la Foto-estabilidad. 37 1.3.8. Formulación y la Evaluación de la Estabilidad Física. 38 1.3.9. Evaluación del Factor de Protección Solar in vitro. 39 1.3.10. Análisis Infrarrojo FT-IR. 40 1.4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN. 41 1.4.1. Ensayo comprensivo inicial de la extracción del material biológico. 41 1.4.2. Optimización de la Extracción. 57 1.4.3. Evaluación de la Foto-estabilidad de los Extractos. 60 1.1.1. Formulación y la Evaluación de la Estabilidad Física. 62 1.1.2. Evaluación del Factor de Protección Solar in vitro (SPF in vitro). 64 1.1.3. Análisis Infrarrojo FT-IR. 65 1.2. CONCLUSIONES. 68 CAPÍTULO 2 69 2. Extracción y análisis de los polisacáridos de las algas del caribe colombiano Gracilariopsis tenuifrons y Sargassum filipendula. 69 2.1. ESTADO DEL ARTE. 69 2.1.1. Polisacáridos 69 2.2. OBJETIVOS. 73 2.3. MATERIALES Y MÉTODOS. 74 2.3.1. Obtención del extracto con alto contenido de polisacáridos. 74 2.3.2. Desproteinización del Extracto. 74 2.3.3. Determinación del Tamaño de Partícula, Potencial zeta y Viscosidad. 74 2.3.4. Análisis Infrarrojo FT-IR. 74 2.3.5. Fraccionamiento de los Polisacáridos. 75 2.3.6. Caracterización química de las fracciones de polisacárido. 75 2.3.7. Análisis Electroforético. 76 2.3.8. Análisis de resonancia magnética nuclear RMN. 77 2.4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN. 78 2.4.1. Obtención del extracto con alto contenido de polisacáridos. 78 2.4.2. Determinación del tamaño de partícula, potencial zeta y viscosidad. 79 2.4.3. Análisis infrarrojo FT-IR 81 2.4.4. Fraccionamiento de los polisacáridos 81 2.4.5. Caracterización química de polisacárido 82 2.4.6. Análisis electroforético 86 2.4.7. Análisis de resonancia magnética nuclear RMN. 88 2.5. CONCLUSIONES. 92 CAPÍTULO 3 94 3. Evaluación in vitro de la actividad antioxidante y anti-edad de extractos del alga parda Sargassum filipendula y el alga roja Gracilariopsis tenuifrons. 94 3.1. ESTADO DEL ARTE. 94 3.1.1. PROCESO DE ENVEJECIMIENTO. 94 3.1.2. ENVEJECIMIENTO DE LA PIEL. 94 Envejecimiento Intrínseco. 95 Envejecimiento Extrínseco o Foto-envejecimiento. 95 3.1.3. MECANISMOS DEL ENVEJECIMIENTO DE LA PIEL. 96 Acortamiento de los telómeros. 96 Daño en el ADN. 97 Las Sirtuinas. 98 Estrés oxidativo. 98 Daño en la matriz extracelular. 101 3.1.4. ESTRATEGIAS PARA EVITAR EL ENVEJECIMIENTO PREMATURO DE LA PIEL DERIVADO DEL ESTRÉS OXIDATIVO Y CÓMO LAS ALGAS PUEDEN SER UNA ALTERNATIVA. 103 3.2. OBJETIVOS. 107 3.3. MATERIALES Y MÉTODOS. 108 3.3.1. Obtención de los extractos y preparación de los extractos a evaluar. 108 3.3.2. Evaluación de la Actividad antioxidante ABTS. 108 3.3.3. Evaluación de la Actividad antioxidante ORAC (Oxygen Radical Absorbance Capacity). 108 3.3.4. Evaluación de la Actividad antioxidante FRAP (Ferric reducing antioxidant power). 109 3.3.5. Determinación del contenido total de fenoles. 109 3.3.6. Evaluación de la actividad de inhibición de la colagenasa. 109 3.3.7. Cálculos IC50 colagenasa. 110 3.3.8. Avance en la purificación de los extractos con actividad fotoprotectora, antioxidante y anti-edad asociada a la inhibición de la colagenasa. 110 Extracción de polisacáridos presentes en la muestra. 110 Separación cromatográfica. 110 3.4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN. 111 3.4.1. Evaluación de la Actividad antioxidante in vitro. 111 3.4.2. Evaluación de la Actividad antioxidante ABTS. 111 3.4.3. Evaluación de la Actividad antioxidante ORAC (Oxygen Radical Absorbance Capacity). 112 3.4.4. Evaluación de la Actividad antioxidante FRAP (ferric reducing antioxidant power). 113 3.4.5. Determinación del contenido total de fenoles. 114 3.4.6. Evaluación de la actividad de inhibición de la colagenasa. 116 3.4.7. Avance en la purificación del extracto con mayor actividad fotoprotectora, antioxidante y anti-edad asociada a la inhibición de la colagenasa. 118 Extracción de polisacáridos presentes en la muestra. 119 Separación cromatográfica. 120 3.5. CONCLUSIONES. 123 CAPÍTULO 4 124 4. Detección de metales en las algas Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons, y evaluación la citotoxicidad de sus extractos. 124 4.1. ESTADO DEL ARTE. 124 4.2. OBJETIVOS. 129 4.3. MATERIALES Y MÉTODOS. 130 4.3.1. Detección de metales. 130 4.3.2. Cultivo celular. 133 4.3.3. Ensayo de viabilidad celular MTT. 135 4.3.4. Análisis Estadístico. 135 4.4. RESULTADOS Y DISCUSIONES. 136 4.4.1. Detección de metales. 136 4.4.2. Ensayo de viabilidad celular MTT. 138 4.5. CONCLUSIONES. 141 5. CONCLUSIONES GENERALES. 142 6. PERSPECTIVAS DE LA INVESTIGACIÓN. 146 a. Cuantificar metales pesados. 146 b. Evaluar actividades biológicas, determinar metales pesados y citotoxicidad de las fracciones de polisacáridos provenientes del alga Gracilariopsis tenuifrons. 146 c. Purificar e identificar componentes activos del extracto del alga Sargassum filipendula. 146 7. TABLA DE SIGLAS. 147 8. LISTA DE IMÁGENES 148 9. LISTA DE TABLAS 149 10. LISTA DE GRÁFICAS 151 11. BIBLIOGRAFÍA 155 12. PRODUCTOS. 169 Formación de Recurso Humano 169 Participaciones en congresos 169 Publicaciones 169CosméticosCOL0007462DoctoradoDoctor en Ciencias Químicas169 páginasapplication/pdfspaUniversidad de AntioquiaDoctorado en Ciencias QuímicasInstituto de QuímicaMedellín, ColombiaFacultad de Ciencias Exactas y NaturalesCampus Medellín - Ciudad Universitariahttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/info:eu-repo/semantics/openAccessAttribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 Internationalhttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2Envejecimiento - PrevenciónAging - PreventionFactor de protección solarSun protection factorPolisacáridosPolysaccharidesAlga marinaSeaweedsCitotoxicidadCytotoxicityPropiedad antioxidanteAntioxidant propertiesExtracto vegetalPlant extractsGracilariopsis tenuifronsSargssum filipendulahttp://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_14154http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_34251https://agrovoc.fao.org/browse/agrovoc/es/page/c_11805097http://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_8166http://id.loc.gov/authorities/subjects/sh98002534https://id.nlm.nih.gov/mesh/D059405https://id.nlm.nih.gov/mesh/D011134ODS 14: Vida submarina. Conservar y utilizar sosteniblemente los océanos, los mares y los recursos marinos para el desarrollo sostenibleEvaluación de aplicaciones cosméticas de extractos de las macroalgas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons con un enfoque en foto-protección, actividad antioxidante, anti-edad y agentes reológicosTrabajo de grado - Doctoradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_db06http://purl.org/redcol/resource_type/TDTexthttp://purl.org/coar/version/c_b1a7d7d4d402bcceinfo:eu-repo/semantics/doctoralThesisinfo:eu-repo/semantics/draftPayne A, Nahashon S, Taka E, Adinew GM, Soliman KFA. Epigallocatechin-3-Gallate (EGCG): New Therapeutic Perspectives for Neuroprotection, Aging, and Neuroinflammation for the Modern Age. Biomolecules. 2022;12(3). doi:10.3390/biom12030371Martín AM. Biología de la piel y cancer. 2013:33.Mejía JC, Atehortúa L, Puertas MÁ. Foto-protección: Mecanismos bioquímicos, punto de partida hacia mejores filtros solares. Dermatologia Cosmet Medica y Quir. 2014;12(4):272-281.Jansen R, Osterwalder U, Wang SQ, Burnett M, Lim HW. Photoprotection: part II. Sunscreen: development, efficacy, and controversies. J Am Acad Dermatol. 2013;69(6):867.e1-867.e14. doi:10.1016/j.jaad.2013.08.022Balakrishnan KP, Narayanaswamy N, Itc R, Industrial P, Phase A. Botanicals as sunscreens: Their role in the prevention of photoaging and skin cancer. Int J Res Cosmet Sci. 2011;1(1):13-16.Young AR, Claveau J, Rossi AB. Ultraviolet radiation and the skin: Photobiology and sunscreen photoprotection. J Am Acad Dermatol. 2017;76(3):S100-S109. doi:10.1016/j.jaad.2016.09.038Jansen R, Wang SQ, Burnett M, Osterwalder U, Lim HW. Photoprotection: Part I. Photoprotection by naturally occurring, physical, and systemic agents. J Am Acad Dermatol. 2013;69(6):853.e1-853.e12. doi:10.1016/j.jaad.2013.08.021Mancebo SE, Hu JY, Wang SQ. Sunscreens: A review of health benefits, regulations, and controversies. Dermatol Clin. 2014;32(3):427-438. doi:10.1016/j.det.2014.03.011Gilbert E, Pirot F, Bertholle V, Roussel L, Falson F, Padois K. Commonly used UV filter toxicity on biological functions: Review of last decade studies. Int J Cosmet Sci. 2013;35(3):208-219. doi:10.1111/ics.12030Lim HW, Arellano-Mendoza M-I, Stengel F. Current challenges in photoprotection. J Am Acad Dermatol. 2017;76(3S1):S91-S99. doi:10.1016/j.jaad.2016.09.040Yeager DG, Lim HW. What’s New in Photoprotection: A Review of New Concepts and Controversies. Dermatol Clin. 2019;37(2):149-157. doi:10.1016/j.det.2018.11.003Ziegler CB· C. Cell Aging: Molecular Mechanisms and Implications for Disease.; 2014.Bosch R, Philips N, Suárez-Pérez J, et al. Mechanisms of Photoaging and Cutaneous Photocarcinogenesis, and Photoprotective Strategies with Phytochemicals. Antioxidants. 2015;4(2):248-268. doi:10.3390/antiox4020248Kozina LS, Borzova I V, Arutiunov VA, Ryzhak GA. Role of Oxidative Stress in Skin Aging. 2013;3(1):18-22. doi:10.1134/S2079057013010086Poon F, Kang S, Chien AL. Mechanisms and treatments of photoaging. Photodermatol Photoimmunol Photomed. 2015;31(2):65-74. doi:10.1111/phpp.12145Kai FB, Drain AP, Weaver VM. The Extracellular Matrix Modulates the Metastatic Journey. Dev Cell. 2019;49(3):332-346. doi:10.1016/j.devcel.2019.03.026Nikitovic D, Corsini E, Kouretas D, Tsatsakis A, Tzanakakis G. ROS-major mediators of extracellular matrix remodeling during tumor progression. Food Chem Toxicol. 2013;61:178-186. doi:10.1016/j.fct.2013.06.013Aurélie Le Pagea, Abdelouahed Khalila, Patrick Vermette, Eric H. Frostc, Anis Larbi JMW and TF. The role of elastin-derived peptides in human physiology and diseases Aurélie. Elseviern Matrix Biol. 2019;84:81-96.V.S Krishnamurthy Chennubhotla MUAM and KSR. Exploitation of marine algae in Indo-Pacific region. Seaweed ResUtiln. 2013;35:1-7.Cardozo KHM, Guaratini T, Barros MP, et al. Metabolites from algae with economical impact. Comp Biochem Physiol - C Toxicol Pharmacol. 2007;146(1-2 SPEC. ISS.):60-78. doi:10.1016/j.cbpc.2006.05.007Wijesinghe WAJP, Jeon YJ. Biological activities and potential industrial applications of fucose rich sulfated polysaccharides and fucoidans isolated from brown seaweeds: A review. Carbohydr Polym. 2012;88(1):13-20. doi:10.1016/j.carbpol.2011.12.029Kim SK, Pangestuti R. Potential Role of Marine Algae on Female Health, Beauty, and Longevity. Vol 64. 1st ed. Elsevier Inc.; 2011. doi:10.1016/B978-0-12-387669-0.00004-1Senevirathne WSM, Kim SK. Cosmeceuticals from Algae. Woodhead Publishing Limited; 2013. doi:10.1533/9780857098689.4.694Wang HMD, Chen CC, Huynh P, Chang JS. Exploring the potential of using algae in cosmetics. Bioresour Technol. 2015;184:355-362. doi:10.1016/j.biortech.2014.12.001Lalegerie F, Lajili S, Bedoux G, Taupin L, Stiger-pouvreau V, Connan S. Photo-protective compounds in red macroalgae from Brittany: Considerable diversity in mycosporine-like amino acids (MAAs). Mar Environ Res. 2019;147(April):37-48. doi:10.1016/j.marenvres.2019.04.001de Almeida CLF, Falcão H de S, Lima GR d. M, et al. Bioactivities from marine algae of the genus Gracilaria. Int J Mol Sci. 2011;12(7):4550-4573. doi:10.3390/ijms12074550Senni K, Pereira J, Gueniche F, et al. Marine polysaccharides: A source of bioactive molecules for cell therapy and tissue engineering. Mar Drugs. 2011;9(9):1664-1681. doi:10.3390/md9091664Khotimchenko M, Tiasto V, Kalitnik A, et al. Antitumor potential of carrageenans from marine red algae. Carbohydr Polym. 2020;246(February):116568. doi:10.1016/j.carbpol.2020.116568Kuznetsova TA, Andryukov BG, Besednova NN, Zaporozhets TS, Kalinin A V. Marine algae polysaccharides as basis for wound dressings, drug delivery, and tissue engineering: A review. J Mar Sci Eng. 2020;8(7). doi:10.3390/JMSE8070481Hans N, Malik A, Naik S. Antiviral activity of sulfated polysaccharides from marine algae and its application in combating COVID-19: Mini review. Bioresour Technol Reports. 2021;13(December 2020):100623. doi:10.1016/j.biteb.2020.100623Ahmadi A, Zorofchian Moghadamtousi S, Abubakar S, Zandi K. Antiviral potential of algae polysaccharides isolated from marine sources: A review. Biomed Res Int. 2015;2015. doi:10.1155/2015/825203Costa LS, Fidelis GP, Cordeiro SL, et al. Biological activities of sulfated polysaccharides from tropical seaweeds. Biomed Pharmacother. 2010;64(1):21-28. doi:10.1016/j.biopha.2009.03.005Wang HMD, Chen CC, Huynh P, Chang JS. Exploring the potential of using algae in cosmetics. Bioresour Technol. 2015;184:355-362. doi:10.1016/j.biortech.2014.12.001Thiyagarasaiyar K, Goh B, Jeon Y. Algae Metabolites in Cosmeceutical : An Overview of Current Applications and Challenges.Berthon J, Nachat-kappes R, Bey M, Cadoret J, Renimel I, Filaire E. Marine algae as attractive source to skin care. 2017;5762. doi:10.1080/10715762.2017.1355550Berthon JY, Nachat-Kappes R, Bey M, Cadoret JP, Renimel I, Filaire E. Marine algae as attractive source to skin care. Free Radic Res. 2017;51(6):555-567. doi:10.1080/10715762.2017.1355550Ryu J, Park SJ, Kim IH, Choi YH, Nam TJ. Protective effect of porphyra-334 on UVA-induced photoaging in human skin fibroblasts. Int J Mol Med. 2014;34(3):796-803. doi:10.3892/ijmm.2014.1815Łęska B, Messyasz B, Schroeder G. Application of Algae Biomass and Algae Extracts in Cosmetic Formulations. Algae Biomass Charact Appl. 2018;(May 2017):89-101. doi:10.1007/978-3-319-74703-3_8Liu T, Li N, Yan Y qi, et al. Recent advances in the anti-aging effects of phytoestrogens on collagen, water content, and oxidative stress. Phyther Res. 2020;34(3):435-447. doi:10.1002/ptr.6538Prasad KN, Wu M, Bondy SC. Telomere shortening during aging: Attenuation by antioxidants and anti-inflammatory agents. Mech Ageing Dev. 2017;164:61-66. doi:10.1016/j.mad.2017.04.004Sataloff RT, Johns MM, Kost KM. Handbook of Microalgae-Based Processes and Products.; 2020.Priyan Shanura Fernando I, Kim KN, Kim D, Jeon YJ. Algal polysaccharides: potential bioactive substances for cosmeceutical applications. Crit Rev Biotechnol. 2019;39(1):99-113. doi:10.1080/07388551.2018.1503995Zubia M, Freile-Pelegrín Y, Robledo D. Photosynthesis, pigment composition and antioxidant defences in the red alga Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariales, Rhodophyta) under environmental stress. J Appl Phycol. 2014;26(5):2001-2010. doi:10.1007/s10811-014-0325-3Bouzon ZL, Schmidt EC, Almeida AC de, Yokoya NS, Oliveira MC de, Chow F. Cytochemical characterization and ultrastructural organization in calluses of the agarophyte Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariales, Rhodophyta). Micron. 2011;42(1):80-86. doi:10.1016/j.micron.2010.07.012Carneiro MA do A, Resende JF de J, Oliveira SR, et al. Performance of the agarophyte Gracilariopsis tenuifrons in a multi-trophic aquaculture system with Litopenaeus vannamei using water recirculation. J Appl Phycol. 2021;33(1):481-490. doi:10.1007/s10811-020-02318-7Barrios J, Lemus A. Estructura y dinámica de comunidades asociadas a cultivos de Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariaceae) en Chacopata, Sucre, Venezuela. I: Inventario faunístico. Rev Biol Trop. 2000;48(1 SUPPL. 1):137-143.Rincones, Raúl E. Moreno DA. Aspectos técnicos y económicos para el establecimiento comenciañ de maricultivo de algas en Colombia: Experiencias en la Península de la Guajira. Ambient y Desarro. 2011;15(28).Propiedades físicas del agar de Gracilariopsis tenuifrons Gracila.Marimuthu J. Phytochemical characterization of brown seaweed Sargassum wightii. 2012. doi:10.1016/S2222-1808(12)60134-0Devault DA, Pierre R, Marfaing H, Dolique F, Lopez P. Sargassum contamination and consequences for downstream uses : a review. 2021:567-602.Rodrigues Silva JI, De Melo Ferreira AC, Da Costa ACA. Uranium biosorption under dynamic conditions: Preliminary tests with Sargassum filipendula in real radioactive wastewater containing Ba, Cr, Fe, Mn, Pb, Ca and Mg. J Radioanal Nucl Chem. 2009;279(3):909-914. doi:10.1007/s10967-008-7366-5Nascimento Júnior WJ, Silva MGC, Vieira MGA. Competitive fixed-bed biosorption of Ag(I) and Cu(II) ions on Sargassum filipendula seaweed waste. J Water Process Eng. 2020;36(April). doi:10.1016/j.jwpe.2020.101294Moino BP, Costa CSD, Carlos da Silva MG, Vieira MGA. Reuse of the alginate extraction waste from Sargassum filipendula for Ni(II) biosorption. Chem Eng Commun. 2020;207(1):17-30. doi:10.1080/00986445.2018.1564909Luna AS, Costa ALH, da Costa ACA, Henriques CA. Competitive biosorption of cadmium(II) and zinc(II) ions from binary systems by Sargassum filipendula. Bioresour Technol. 2010;101(14):5104-5111. doi:10.1016/j.biortech.2010.01.138Cardoso SL, Costa CSD, Nishikawa E, da Silva MGC, Vieira MGA. Biosorption of toxic metals using the alginate extraction residue from the brown algae Sargassum filipendula as a natural ion-exchanger. J Clean Prod. 2017;165:491-499. doi:10.1016/j.jclepro.2017.07.114Bertagnolli C, da Silva MGC, Guibal E. Chromium biosorption using the residue of alginate extraction from Sargassum filipendula. Chem Eng J. 2014;237:362-371. doi:10.1016/j.cej.2013.10.024Bertagnolli C, Espindola APDM, Kleinübing SJ, Tasic L, Silva MGC Da. Sargassum filipendula alginate from Brazil: Seasonal influence and characteristics. Carbohydr Polym. 2014;111:619-623. doi:10.1016/j.carbpol.2014.05.024Series C. Fucoidan Content from Brown Seaweed ( Sargassum filipendula ) And Its Potential As Radical Scavenger Fucoidan Content from Brown Seaweed ( Sargassum filipendula ) And Its Potential As Radical Scavenger. 2020.Sierra-Vélez L, Álvarez-León R. Bromatological Comparison of Native (Gracilariopsis Tenuifrons, Sargassum Filipendula) and Exotic Algae (Kappaphycus Alvarezii) of the Colombian Caribbean Sea. Bol Cient Cent Museos Mus Hist Nat. 2009;13(2):17-25.Costa LS, Fidelis GP, Telles CBS, et al. Antioxidant and antiproliferative activities of heterofucans from the seaweed Sargassum filipendula. Mar Drugs. 2011;9(6):952-966. doi:10.3390/md9060952Telles CBS, Mendes-Aguiar C, Fidelis GP, et al. Immunomodulatory effects and antimicrobial activity of heterofucans from Sargassum filipendula. J Appl Phycol. 2018;30(1):569-578. doi:10.1007/s10811-017-1218-zSeebode C, Lehmann J, Emmert S. Photocarcinogenesis and Skin Cancer Prevention Strategies. Anticancer Res. 2016;36(3):1371-1378. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26977038.Narayanan DL, Saladi RN, Fox JL. Review: Ultraviolet radiation and skin cancer. Int J Dermatol. 2010;49(9):978-986. doi:10.1111/j.1365-4632.2010.04474.xD’Orazio J, Jarrett S, Amaro-Ortiz A, Scott T. UV radiation and the skin. Int J Mol Sci. 2013;14(6):12222-12248. doi:10.3390/ijms140612222Maslin DL. Do suncreens protect us? Int J Dermatol. 2014;53(11):1319-1323. doi:10.1111/ijd.12606Dupont E, Gomez J, Bilodeau D. Beyond UV radiation: A skin under challenge. Int J Cosmet Sci. 2013;35(3):224-232. doi:10.1111/ics.12036Juan P, Mejía C. Radiación solar UltraVioleta , efectos nocivos y Mecanismos naturales de fotoprotección. (3).Gilaberte Y, Coscojuela C, Carmen M, Santamaría S De, González S. Fotoprotección. 2015;94(5):271-293.Gimier LP. Actualización de mecanismos moleculares cutáneos. III. Acido urocánico y cosmética. Offarm Farm y Soc. 2002;21:8-10. http://europa.sim.ucm.es/compludoc/AA?articuloId=180784.Cole C. Sunscreens - what is the ideal testing model? Photodermatol Photoimmunol Photomed. 2014;30(2-3):81-87. doi:10.1111/phpp.12095Kaur a, Thatai P, Sapra B. Need of UV protection and evaluation of efficacy of sunscreens. J Cosmet Sci. 2014;65(5):315-345.Moyal D, Alard V, Bertin C, et al. The revised COLIPA in vitro UVA method. Int J Cosmet Sci. 2013;35(1):35-40. doi:10.1111/j.1468-2494.2012.00748.xKumar S, Baweja P, Sahoo D. Diatoms: Yellow or Golden Brown Algae.; 2015. doi:10.1007/978-94-017-7321-8_8Radulovich R, Umanzor S. Algas Tropicales Cultivo y Uso Como Alimento 2013 (Tropical Seaweeds: Cultivation and Use as Food) Aquatic Agriculture: Cultivating Floating Crops on Lakes View Project Giant Kelp Restoration in Baja California, Mexico View Project. Vol 2013.; 2013. https://www.researchgate.net/publication/272168650.Rastogi RP, Sonani RR, Madamwar D. UV Photoprotectants From Algae-Synthesis and Bio-Functionalities. Algal Green Chem Recent Prog Biotechnol. 2017:17-38. doi:10.1016/B978-0-444-63784-0.00002-3Hartmann A, Holzinger A, Ganzera M, Karsten U. Prasiolin, a new UV-sunscreen compound in the terrestrial green macroalga Prasiola calophylla (Carmichael ex Greville) Kützing (Trebouxiophyceae, Chlorophyta). Planta. 2016;243(1):161-169. doi:10.1007/s00425-015-2396-zDionisio-Sese ML. Aquatic microalgae as potential sources of UV-screening compounds. Philipp J Sci. 2010;139(1):5-16.Conde FR, Churio MS, Previtali CM. The photoprotector mechanism of mycosporine-like amino acids. Excited-state properties and photostability of porphyra-334 in aqueous solution. J Photochem Photobiol B Biol. 2000;56(2-3):139-144. doi:10.1016/S1011-1344(00)00066-XTosato MG, Orallo DE, Fangio MF, Diz V DL and CM. 3Nanomaterials and natural products for UV-photoprotection. In: Surface Chemistry of Nanobiomaterials. ; 2016. https://doi.org/10.1016/B978-0-323-42861-3.00012-1.Whitehead K, Hedges JI. Photodegradation and photosensitization of mycosporine-like amino acids. J Photochem Photobiol B Biol. 2005;80(2):115-121. doi:10.1016/j.jphotobiol.2005.03.008Bajpai R, Prokop A, Zappi M. Algal biorefineries: Volume 1: Cultivation of cells and products. Algal Biorefineries Vol 1 Cultiv Cells Prod. 2014:1-324. doi:10.1007/978-94-007-7494-0Hoyer K, Karsten U, Wiencke C. Induction of sunscreen compounds in Antarctic macroalgae by different radiation conditions. Mar Biol. 2002;141(4):619-627. doi:10.1007/s00227-002-0871-0Zhaohui Z, Xin G, Tashiro Y, Matsukawa S, Ogawa H. The isolation of prophyra-334 from marine algae and its UV-absorption behavior. Chinese J Oceanol Limnol. 2005;23(4):400-405. doi:10.1007/bf02842683Mobin SMA, Chowdhury H, Alam F. Commercially important bioproducts from microalgae and their current applications-A review. Energy Procedia. 2019;160(2018):752-760. doi:10.1016/j.egypro.2019.02.183Wijesekara I, Kim SK, Li Y, Li YX. Phlorotannins as bioactive agents from brown algae. Process Biochem. 2011;46(12):2219-2224. doi:10.1016/j.procbio.2011.09.015Berthon JY, Nachat-Kappes R, Bey M, Cadoret JP, Renimel I, Filaire E. Marine algae as attractive source to skin care. Free Radic Res. 2017;51(6):555-567. doi:10.1080/10715762.2017.1355550Karsten U. Defense strategies of algae and cyanobacteria against solar ultraviolet radiation. Algal Chem Ecol. 2008;9783540741:273-296. doi:10.1007/978-3-540-74181-7_13Ariede MB, Candido TM, Jacome ALM, Velasco MVR, de Carvalho JCM, Baby AR. Cosmetic attributes of algae - A review. Algal Res. 2017;25(May):483-487. doi:10.1016/j.algal.2017.05.019Le Lann K, Surget G, Couteau C, et al. Sunscreen, antioxidant, and bactericide capacities of phlorotannins from the brown macroalga Halidrys siliquosa. J Appl Phycol. 2016;28(6):3547-3559. doi:10.1007/s10811-016-0853-0Copia J, Gaete H, Zúñiga G, Hidalgo M, Cabrera E. Efecto de la radiación ultravioleta B en la producción de polifenoles en la microalga marina Chlorella sp . Effect of ultraviolet B radiation on the production of polyphenols in the marine microalga Chlorella sp . 2012;40(1):113-123. doi:10.3856/vol40-issue1-fulltext-11Jesumani V et al. Potential Use of Seaweed Bioactive Compounds in Skincare—A Review.pdf. 2019.Schmitz C, Ramlov F, de Lucena LAF, et al. UVR and PAR absorbing compounds of marine brown macroalgae along a latitudinal gradient of the Brazilian coast. J Photochem Photobiol B Biol. 2018;178(May 2017):165-174. doi:10.1016/j.jphotobiol.2017.10.029Andersson M, Schubert H, Pedersén M, Snoeijs P. Different patterns of carotenoid composition and photosynthesis acclimation in two tropical red algae. Mar Biol. 2006;149(3):653-665. doi:10.1007/s00227-005-0174-3Lena G Di, Casini I, Lucarini M, Lombardi-boccia G. Carotenoid profiling of five microalgae species from large-scale production. Food Res Int. 2019;120(November 2018):810-818. doi:10.1016/j.foodres.2018.11.043Ch MAR. GAZETTE. XLI(3Population studies in Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariales, Rhodophyta)- physiological and molecular approaches.pdf.Sierra-v L, Guajira L. Comparación bromatológica de las algas nativas (Gracilariopsus tenuifrons, Sargassum filipendula) y exóticas (Kappaphycus Alvarezii) del caribe Colombiano. Boletín Científico Mus Hist Nat. 2009;1:6-14.Brito L., Silva S. Fenología y ciclo de vida del alga Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariaceae) en Sucre, Venezuela Leonor. J Trop Biol. 2005;53(1):67-73.Torres PB, Chow F, Ferreira MJP, dos Santos DYAC. Mycosporine-like amino acids from Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariales, Rhodophyta) and its variation under high light. J Appl Phycol. 2016;28(3):2035-2040. doi:10.1007/s10811-015-0708-0Montgomery D. Diseño y Análisis de Experimentos.; 2004.Of A. H Andbook of E Nvironmental.Chemat F, Zill-e-Huma, Khan MK. Applications of ultrasound in food technology: Processing, preservation and extraction. Ultrason Sonochem. 2011;18(4):813-835. doi:10.1016/j.ultsonch.2010.11.023Luque-García JL, Luque De Castro MD. Ultrasound: A powerful tool for leaching. TrAC - Trends Anal Chem. 2003;22(1):41-47. doi:10.1016/S0165-9936(03)00102-XNewman DJ, Cragg GM. Natural Products as. J Nat Prod. 2012;75(3):311-335. doi:10.1021/np200906s.NaturalHartmann A, Murauer A, Ganzera M. Quantitative analysis of mycosporine-like amino acids in marine algae by capillary electrophoresis with diode-array detection. J Pharm Biomed Anal. 2017;138:153-157. doi:10.1016/j.jpba.2017.01.053Min-Sup Lee,† Taisun Shin,‡ Tadanobu Utsuki,§ Jae-Sue Choi,† Dae-Seok Byun † and Hyeung-Rak Kim. Isolation and Identification of Phlorotannins from Ecklonia stolonifera with Antioxidant and Hepatoprotective Properties in Tacrine-Treated HepG2 Cells. J Agric Food Chem. 2012:5340−5349.Zou Y, Qian ZJ, Li Y, Kim MM, Lee SH, Kim SK. Antioxidant effects of phlorotannins isolated from Ishige okamurae in free radical mediated oxidative systems. J Agric Food Chem. 2008;56(16):7001-7009. doi:10.1021/jf801133hYONG LI,†,‡ SANG-HOON LEE,§ QUANG-TO LE M-MK, AND, SE-KWON KIM †. Anti-allergic Effects of Phlorotannins on Histamine Release via Binding Inhibition between IgE and FcεRI. J Agric Food Chem. 2008;56:12073–12080.NA YOUNG YOON,† TAE-KIL EOM M-MK, AND SE-KWON KIM,† ‡. Inhibitory Effect of Phlorotannins Isolated from Ecklonia cava on Mushroom Tyrosinase Activity and Melanin Formation in Mouse B16F10 Melanoma Cells. J Agric Food Chem. 2009;57:4124–4129.T Wang,,†,‡,§,# Rósa Jónsdóttir,‡ Haiyan Liu,⊥ Liwei Gu HGK, Sivakumar Raghavan and GO. Antioxidant Capacities of Phlorotannins Extracted from the Brown Algae Fucus vesiculosus. J Agric Food Chem. 2012;60:5874−5883.A-REUM KIM,† TAI-SUN SHIN,‡MIN-SUP LEE,† JI-YOUNG PARK K-EP, NA-YOUNG YOON,† JONG-SOON KIM,† JAE-SUE CHOI B-CJ, DAE-SEOK BYUN N-KP, AND HYEUNG-RAK KIM*. Isolation and Identification of Phlorotannins from Ecklonia stolonifera with Antioxidant and Anti-inflammatory Properties. J Agric Food Chem. 2009;57:3483–3489.Karsten U, Hoyer K. MYCOSPORINE-LIKE AMINO ACIDS AND PHYLOGENIES IN GREEN ALGAE : PRASIOLA AND ITS RELATIVES FROM THE TREBOUXIOPHYCEAE ( CHLOROPHYTA ) 1 Thomas Friedl Rhena Schumann and Sebastian Lembcke. 2005;566:557-566. doi:10.1111/j.1529-8817.2005.00081.xCoba F De, Aguilera J, Figueroa FL. Antioxidant activity of mycosporine-like amino acids isolated from three red macroalgae and one marine lichen. 2009:161-169. doi:10.1007/s10811-008-9345-1quing-Wen Zhang L-GL and W-C ye. Techniques for extraction and isolation of natural producks: a comprenhensive review.pdf. 2018:16.Lucena SC and R. Recent advaces in extraction and stirring integrated techniques.pdf. 2017.Urbach F. The historical aspects of sunscreens. J Photochem Photobiol B Biol. 2001;64(2-3):99-104. doi:10.1016/S1011-1344(01)00202-0Schneider G, Figueroa FL, Vega J, et al. Photoprotection properties of marine photosynthetic organisms grown in high ultraviolet exposure areas: Cosmeceutical applications. Algal Res. 2020;49. doi:10.1016/j.algal.2020.101956Roldán DL. Prueba estadística ANOVA y Tukey. Prueba estadística ANOVA y Tukey.Grande DT. ANOVA with Games-Howell Post Hoc Test in SPSS. ANOVA with Games-Howell Post Hoc Test in SPSS.Peter Statistics. Analysing a nominal and scale variable. Part 3b: Post-hoc test. https://peterstatistics.com/CrashCourse/3-TwoVarUnpair/NomScale/NomScale3b.html.Fundamentals of Ultrasound Assisted Extraction.pdf.Rodríguez Sánchez RA, Canelón DJ, Cosenza VA, et al. Gracilariopsis hommersandii, a red seaweed, source of agar and sulfated polysaccharides with unusual structures. Carbohydr Polym. 2019;213:138-146. doi:10.1016/j.carbpol.2019.02.071Usov AI. Polysaccharides of the Red Algae. Vol 65. 1st ed. Elsevier Inc.; 2011. doi:10.1016/B978-0-12-385520-6.00004-2Usov AI, Bilan MI, Klochkova NG. Polysaccharides of Algae 48. Polysaccharide Composition of Several Calcareous Red Algae: Isolation of Alginate from Corallina pilulifera P. et R. (Rhodophyta, Corallinaceae). Bot Mar. 1995;38(1-6):43-52. doi:10.1515/botm.1995.38.1-6.43Chemat F, Vian MA, Cravotto G. Green extraction of natural products: Concept and principles. Int J Mol Sci. 2012;13(7):8615-8627. doi:10.3390/ijms13078615Azmir J, Zaidul ISM, Rahman MM, et al. Techniques for extraction of bioactive compounds from plant materials: A review. J Food Eng. 2013;117(4):426-436. doi:10.1016/j.jfoodeng.2013.01.014Wen C, Zhang J, Zhang H, et al. Advances in ultrasound assisted extraction of bioactive compounds from cash crops – A review. Ultrason Sonochem. 2018;48:538-549. doi:10.1016/j.ultsonch.2018.07.018Ultrasound- A clean, green extraction technology.pdf.Barel AO, Paye M, Maibach HI. Handbook of cosmetic science and technology. Handb Cosmet Sci Technol Third Ed. 2009:1-890. doi:10.1001/archderm.138.9.1262-aGhimire P, Chandra Shrestha A, Pandey S. Guidelines on Stability Studies of Pharmaceutical Products and Shelf Life Estimation. Int J Adv Pharm Biotechnol. 2020;6(1):15-23. doi:10.38111/ijapb.20200601004Luna-Pérez Y, Ríos-López LG, Otero-Tejada EL, Mejía-Giraldo JC, Puertas-Mejía MÁ. Sargassum filipendula, a Source of Bioactive Compounds with Antioxidant and Matrix Metalloproteinases Inhibition Activities In Vitro with Potential Dermocosmetic Application. Antioxidants. 2023;12(4). doi:10.3390/antiox12040876Mycosporine-like amino acids from Gracilariopsis tenuifrons.pdf.Resende DISP, Jesus A, Sousa Lobo JM, et al. Up-to-Date Overview of the Use of Natural Ingredients in Sunscreens. Pharmaceuticals. 2022;15(3). doi:10.3390/ph15030372Ahsan H. The significance of complex polysaccharides in personal care formulations. J Carbohydr Chem. 2019;38(4):213-233. doi:10.1080/07328303.2019.1615498Priyan Shanura Fernando I, Kim KN, Kim D, Jeon YJ. Algal polysaccharides: potential bioactive substances for cosmeceutical applications. Crit Rev Biotechnol. 2019;39(1):99-113. doi:10.1080/07388551.2018.1503995Miranda V, Fimbres D, Miranda Anselmo, et al. Microalgas Marinas: Una Fuente Valiosa de Polisacáridos con Propiedades Bioactivas y Funcionales. Rev Uninson. 2023;18(1):1-15. https://invurnus.unison.mx/index.php/INVURNUS/article/view/91/68.Kim IH, Lee JH. Antimicrobial activities against methicillin-resistant Staphylococcus aureus from macroalgae. J Ind Eng Chem. 2008;14(5):568-572. doi:10.1016/j.jiec.2008.04.004Manivasagan P, Oh J. Marine polysaccharide-based nanomaterials as a novel source of nanobiotechnological applications. Int J Biol Macromol. 2016;82:315-327. doi:10.1016/j.ijbiomac.2015.10.081Usman A, Khalid S, Usman A, Hussain Z, Wang Y. Algal Polysaccharides, Novel Application, and Outlook. Algae Based Polym Blends, Compos Chem Biotechnol Mater Sci. 2017:115-153. doi:10.1016/B978-0-12-812360-7.00005-7Skoler-Karpoff S, Ramjee G, Ahmed K, et al. Efficacy of Carraguard for prevention of HIV infection in women in South Africa: a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet. 2008;372(9654):1977-1987. doi:10.1016/S0140-6736(08)61842-5Do BC, Dang TT, Berrin JG, et al. Cloning, expression in Pichia pastoris, and characterization of a thermostable GH5 mannan endo-1,4-beta-mannosidase from Aspergillus niger BK01. Microb Cell Fact. 2009;8:59. doi:10.1021/ac60111a017Li J, Kisara K, Danielsson S, Lindström ME, Gellerstedt G. An improved methodology for the quantification of uronic acid units in xylans and other polysaccharides. Carbohydr Res. 2007;342(11):1442-1449. doi:10.1016/j.carres.2007.03.031Dubois M, Gilles KA, Hamilton JK, Rebers PA, Smith F. Colorimetric Method for Determination of Sugars and Related Substances. Anal Chem. 1956;28(3):350-356. doi:10.1021/ac60111a017Farndale RW, Buttle DJ, Barrett AJ. Improved quantitation and discrimination of sulphated glycosaminoglycans by use of dimethylmethylene blue. BBA - Gen Subj. 1986;883(2):173-177. doi:10.1016/0304-4165(86)90306-5Whltley CB, Draper KA, Dutton CM, Neglia JP. DiagnosticTest for Mucopolysaccharidosis . I . Direct Method for QuantifyingExcessive Urinary GlycosaminoglycanExcretion. 1989;35(3):374-379.Turnbull JE, Gallagher JT. Oligosaccharide mapping of heparan sulphate by polyacrylamide-gradient-gel electrophoresis and electrotransfer to nylon membrane. Biochem J. 1988;251(2):597-608. doi:10.1042/bj2510597Bertagnolli C, Espindola APDM, Kleinübing SJ, Tasic L, Silva MGC Da. Sargassum filipendula alginate from Brazil: Seasonal influence and characteristics. Carbohydr Polym. 2014;111:619-623. doi:10.1016/j.carbpol.2014.05.024Jiménez L. Aprovechamiento del alga marina Sargassum spp. mediantedigestión anaerobia y tratamiento en medio ácido. 2020. https://repositorio.cinvestav.mx/bitstream/handle/cinvestav/3396/SSIT0016645.pdf?sequence=1.Zecchinel F. E, Brito L. L, Lárez E. G. Propiedades físicas del agar de Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariaceae) en Sucre, Venezuela. Rev Biol Trop. 2000;48(1 SUPPL. 1):193-197.Gupta D, Martinez DC, Puertas-Mejía MA, Hearnden VL, Reilly GC. The Effects of Fucoidan Derived from Sargassum filipendula and Fucus vesiculosus on the Survival and Mineralisation of Osteogenic Progenitors. Int J Mol Sci. 2024;25(4). doi:10.3390/ijms25042085Rodrigues D, Freitas AC, Pereira L, et al. Chemical composition of red, brown and green macroalgae from Buarcos bay in Central West Coast of Portugal. Food Chem. 2015;183:197-207. doi:10.1016/j.foodchem.2015.03.057Hu X, Goff HD. Fractionation of polysaccharides by gradient non-solvent precipitation: A review. Trends Food Sci Technol. 2018;81:108-115. doi:10.1016/j.tifs.2018.09.011Vidal S, Williams P, Doco T, Moutounet M, Pellerin P. The polysaccharides of red wine: Total fractionation and characterization. Carbohydr Polym. 2003;54(4):439-447. doi:10.1016/S0144-8617(03)00152-8Wang J, Zhang Q, Zhang Z, Li Z. Antioxidant activity of sulfated polysaccharide fractions extracted from Laminaria japonica. Int J Biol Macromol. 2008;42(2):127-132. doi:10.1016/j.ijbiomac.2007.10.003Yao HYY, Wang JQ, Yin JY, Nie SP, Xie MY. A review of NMR analysis in polysaccharide structure and conformation: Progress, challenge and perspective. Food Res Int. 2021;143. doi:10.1016/j.foodres.2021.110290Usov AI. NMR Spectroscopy of Red Seaweed Polysaccharides: Agars, Carrageenans, and Xylans. Bot Mar. 1984;27(5):189-202. doi:10.1515/botm.1984.27.5.189Campo VL, Kawano DF, Silva DB da, Carvalho I. Carrageenans: Biological properties, chemical modifications and structural analysis - A review. Carbohydr Polym. 2009;77(2):167-180. doi:10.1016/j.carbpol.2009.01.020Youssouf L, Lallemand L, Giraud P, et al. Ultrasound-assisted extraction and structural characterization by NMR of alginates and carrageenans from seaweeds. Carbohydr Polym. 2017;166:55-63. doi:10.1016/j.carbpol.2017.01.041Amatu A, Imberti R. Oxidative Stress in Applied Basic Research and Clinical Practice - Studies on Experimental Models. Vol 56.; 2012. doi:10.4081/ejh.2012.br9Lephart ED. Skin aging and oxidative stress : Equol ’ s anti-aging effects via biochemical and molecular mechanisms. Ageing Res Rev. 2016;31:36-54. doi:10.1016/j.arr.2016.08.001Mukherjee PK, Bahadur S, Chaudhary SK, Harwansh RK, Nema NK. Validation of Medicinal Herbs for Skin Aging. Elsevier Inc.; 2015. doi:10.1016/B978-0-12-800874-4.00005-2Sant’Anna Addor FA. Beyond photoaging: additional factors involved in the process of skin aging. Clin Cosmet Investig Dermatology. 2018;11:437-443. doi:10.2147/CCID.S177448Thring TSA, Hili P, Naughton DP. Anti-collagenase, anti-elastase and anti-oxidant activities of extracts from 21 plants. BMC Complement Altern Med. 2009;9:1-11. doi:10.1186/1472-6882-9-27Han A, Chien AL, Kang S. Photoaging. Dermatol Clin. 2014;32(3):291-299. doi:10.1016/j.det.2014.03.015Tobin DJ. Introduction to skin aging. J Tissue Viability. 2017;26(1):37-46. doi:10.1016/j.jtv.2016.03.002Gragnani A, Cornick S Mac, Chominski V, Ribeiro de Noronha SM, Alves Corrêa de Noronha SA, Ferreira LM. Review of Major Theories of Skin Aging. Adv Aging Res. 2014;03(04):265-284. doi:10.4236/aar.2014.34036J. Charles G. Jeynes, Kalotina Geraki, Christopher Jeynes, Mi Zhaohong,∥ Andrew A. Bettiol,∥ Eva Latorre,⊥ Lorna Wendy Harries and CS. Nanoscale Properties of Human Telomeres Measured with a Dual Purpose X‑ray Fluorescence and Super Resolution Microscopy Gold Nanoparticle Probe.pdf. 2017.Takumi Ishizuka, an Xu and MK, †Research. A Chemistry-Based Method To Detect Individual Telomere Length at a Single Chromosome Terminus. 2013.Neil R. Lloyd, Thayne H. Dickey,† Robert A. Hom and DSW. Tying up the Ends: Plasticity in the Recognition of Single-Stranded DNA at Telomeres. 2016.Prasad KN, Wu M, Bondy SC. Telomere shortening during aging: Attenuation by antioxidants and anti-inflammatory agents. Mech Ageing Dev. 2017;164(April):61-66. doi:10.1016/j.mad.2017.04.004Babbar M, Basu S, Yang B, Croteau DL, Bohr VA. Mitophagy and DNA damage signaling in human aging. Mech Ageing Dev. 2020;186(January):111207. doi:10.1016/j.mad.2020.111207Tiwari V, Wilson DM. DNA Damage and Associated DNA Repair Defects in Disease and Premature Aging. Am J Hum Genet. 2019;105(2):237-257. doi:10.1016/j.ajhg.2019.06.005gildelvalle2015.pdf.Gilchrest BA. Skin aging and photoaging. Dermatology Nurs / Dermatology Nurses" Assoc. 1990;2(2):79-82. doi:10.1088/978-1-6270-5455-3ch1Serravallo M, Jagdeo J, Glick SA, Siegel DM, Brody NI. Sirtuins in dermatology: Applications for future research and therapeutics. Arch Dermatol Res. 2013;305(4):269-282. doi:10.1007/s00403-013-1320-2annurev-biochem-060815-014537.pdf.Huang JY, Hirschey MD, Shimazu T, Ho L, Verdin E. Mitochondrial sirtuins. Biochim Biophys Acta - Proteins Proteomics. 2010;1804(8):1645-1651. doi:10.1016/j.bbapap.2009.12.021Hepel M, Andreescu S. Oxidative Stress and Human Health. 2015;2.Gupta DK, Palma JM, Corpas FJ. Reactive oxygen species and oxidative damage in plants under stress. React Oxyg Species Oxidative Damage Plants Under Stress. 2015:1-370. doi:10.1007/978-3-319-20421-5Hsieh HY, Lee WC, Senadi GC, et al. Discovery, synthetic methodology, and biological evaluation for antiphotoaging activity of bicyclic[1,2,3]triazoles: In vitro and in vivo studies. J Med Chem. 2013;56(13):5422-5435. doi:10.1021/jm400394sGlasauer A, Chandel NS. Do you have any strong views on journals and the peer review system? Curbio. 2013;23(3):R100-R102. doi:10.1016/j.cub.2012.12.011Apak R, Özyürek M, Güçlü K, Çapanoʇlu E. Antioxidant activity/capacity measurement. 3. Reactive oxygen and nitrogen species (ROS/RNS) scavenging assays, oxidative stress biomarkers, and chromatographic/chemometric assays. J Agric Food Chem. 2016;64(5):1046-1070. doi:10.1021/acs.jafc.5b04744Apak R, Özyürek M, Güçlü K, Çapanoʇlu E. Antioxidant Activity/Capacity Measurement. 2. Hydrogen Atom Transfer (HAT)-Based, Mixed-Mode (Electron Transfer (ET)/HAT), and Lipid Peroxidation Assays. J Agric Food Chem. 2016;64(5):1028-1045. doi:10.1021/acs.jafc.5b04743Kuznetsov A V., Kehrer I, Kozlov A V., et al. Mitochondrial ROS production under cellular stress: Comparison of different detection methods. Anal Bioanal Chem. 2011;400(8):2383-2390. doi:10.1007/s00216-011-4764-2acs.chemrev.8b00626.pdf.Diebold L, Chandel NS. Mitochondrial ROS regulation of proliferating cells. Free Radic Biol Med. 2016;100:86-93. doi:10.1016/j.freeradbiomed.2016.04.198Mittler R. ROS Are Good. Trends Plant Sci. 2017;22(1):11-19. doi:10.1016/j.tplants.2016.08.002Khan SB, Kong CS, Kim JA, Kim SK. Protective effect of amphiroa dilatata on ROS induced oxidative damage and MMP expressions in HT1080 cells. Biotechnol Bioprocess Eng. 2010;15(1):191-198. doi:10.1007/s12257-009-0052-9acsbiomaterials.6b00250.pdf.Maxwell C. McCabea, Ryan C. Hill, Kenneth Calderoneb, Yilei Cui, Yan Yan, Taihao Quan GJF and KCH. Alterations in extracellular matrix composition during aging and photoaging of the skin. elsevier MBPLUS. 2020. doi:https://doi.org/10.1016/j.mbplus.2020.100041ijms-17-00868-v2.pdf.Addor FAS. Beyond photoaging: Additional factors involved in the process of skin aging. Clin Cosmet Investig Dermatol. 2018;11:437-443. doi:10.2147/CCID.S177448Amorati R, Valgimigli L. Methods To Measure the Antioxidant Activity of Phytochemicals and Plant Extracts. 2018:1-6. doi:10.1021/acs.jafc.8b01079Biomedical M. The Inhibitory Effects of Eckol and Dieckol from Ecklonia stolonifera on the Expression of Matrix Metalloproteinase-1 in Human Dermal. 2006;29(August):8-12.Murthy KNC, Vanitha A, Rajesha J, Swamy MM, Sowmya PR, Ravishankar GA. In vivo antioxidant activity of carotenoids from Dunaliella salina — a green microalga. 2005;76:1381-1390. doi:10.1016/j.lfs.2004.10.015Wu H, Fu X, Cao W, Xiang W, Hou Y, Ma J. Induction of Apoptosis in Human Glioma Cells by Fucoxanthin via Triggering of ROS-Mediated Oxidative Damage and Regulation of MAPKs and PI3K − AKT Pathways. 2019. doi:10.1021/acs.jafc.8b07126Filomena M, Raposo DJ, Maria A, Morais B De, Manuel R, Costa S. Marine Polysaccharides from Algae with Potential Biomedical Applications. 2015:2967-3028. doi:10.3390/md13052967Olmo A, Picon A, Nuñez M. High pressure processing for the extension of Laminaria ochroleuca ( kombu ) shelf-life : A comparative study with seaweed salting and freezing. Innov Food Sci Emerg Technol. 2019;52(November 2018):420-428. doi:10.1016/j.ifset.2019.02.007Zhang Z, Wang F, Wang X, Liu X, Hou Y, Zhang Q. Extraction of the polysaccharides from five algae and their potential antioxidant activity in vitro. Carbohydr Polym. 2010;82(1):118-121. doi:10.1016/j.carbpol.2010.04.031Wang HD, Li X, Lee D, Chang J. Potential biomedical applications of marine algae. Bioresour Technol. 2017;(May). doi:10.1016/j.biortech.2017.05.198Silva J, Alves C, Freitas R, et al. Antioxidant and Neuroprotective Potential of the Brown Seaweed Bifurcaria bifurcata in an in vitro Parkinson ’ s Disease Model. :1-16. doi:10.3390/md17020085Airanthi MKW, Hosokawa M, Miyashita K. Comparative Antioxidant Activity of Edible Japanese Brown Seaweeds. 2011;76(1). doi:10.1111/j.1750-3841.2010.01915.xMessina CM, Renda G, Laudicella VA, et al. From Ecology to Biotechnology , Study of the Defense Strategies of Algae and Halophytes ( from Trapani Saltworks , NW Sicily ) with a Focus on Antioxidants and Antimicrobial Properties. doi:10.3390/ijms20040881Kang KAH, Lee KHWA, Chae S, et al. Triphlorethol-A from Ecklonia cava protects V79-4 lung fibroblast against hydrogen peroxide induced cell damage. 2005;39(August):883-892. doi:10.1080/10715760500161165Yan X. YCMS y TN. Fucoxantin as the mayor antioxidant in Hijikia fusiformis a common edible seaweed. 1998.Rankel EDNF. How To Standardize the Multiplicity of Methods To. 2008:4901-4908.ABTS FRAP y Fenoles totales Actividad antioxidante y contenido de fenoles totales de algunas especies del género Calophyllum.pdf.Goiris K, Muylaert K, Fraeye I, Foubert I, De Brabanter J, De Cooman L. Antioxidant potential of microalgae in relation to their phenolic and carotenoid content. J Appl Phycol. 2012;24(6):1477-1486. doi:10.1007/s10811-012-9804-6Dang TT, Bowyer MC, Van Altena IA, Scarlett CJ. Comparison of chemical profile and antioxidant properties of the brown algae. Int J Food Sci Technol. 2018;53(1):174-181. doi:10.1111/ijfs.13571Capacidad atrapadora de radicales oxígeno (ORAC) y fenoles totales de frutas y hortalizas de Colombia \| Perspectivas en Nutrición Humana. https://revistas.udea.edu.co/index.php/nutricion/article/view/20310.Park JJ, Lee WY. Anti-glycation effects of brown algae extracts and its phenolic compounds. Food Biosci. 2021;41. doi:10.1016/j.fbio.2021.101042Wang HD, Chen C, Huynh P, Chang J. Bioresource Technology Exploring the potential of using algae in cosmetics. Bioresour Technol. 2015;184:355-362. doi:10.1016/j.biortech.2014.12.001Talero E, García-mauriño S, Ávila-román J, Rodríguez-luna A, Alcaide A, Motilva V. Bioactive Compounds Isolated from Microalgae in Chronic Inflammation and Cancer. 2015:6152-6209. doi:10.3390/md13106152Saidani K, Bedjou F, Benabdesselam F, Touati N. Antifungal activity of methanolic extracts of four Algerian marine algae species. 2012;11(39):9496-9500. doi:10.5897/AJB11.1537Peng J, Yuan J, Wu C, Wang J. Fucoxanthin , a Marine Carotenoid Present in Brown Seaweeds and Diatoms : Metabolism and Bioactivities Relevant to Human Health. 2011:1806-1828. doi:10.3390/md9101806Biotechnol M, Hwang E, Park S, Sun Z. The Protective Effects of Fucosterol Against Skin Damage in UVB-Irradiated Human Dermal Fibroblasts. 2013. doi:10.1007/s10126-013-9554-8Thomas NV, Kim S. Beneficial Effects of Marine Algal Compounds in Cosmeceuticals. 2013:146-164. doi:10.3390/md11010146Shibata T, Fujimoto K, Nagayama K, Yamaguchi K, Nakamura T. Inhibitory activity of brown algal phlorotannins against hyaluronidase. 2002;(1989):703-709.Oon NAYOY, Om TAEILE, Im MOONOOK, Im SEWONK. Inhibitory Effect of Phlorotannins Isolated from Ecklonia cava on Mushroom Tyrosinase Activity and Melanin Formation in Mouse B16F10 Melanoma Cells. 2009:4124-4129. doi:10.1021/jf900006fSamarakoon W, Lee WW, Kim H, et al. A fucoidan fraction purified from Chnoospora minima ; a potential inhibitor of LPS-induced inflammatory responses. Int J Biol Macromol. 2017. doi:10.1016/j.ijbiomac.2017.07.031Safety assessment of personal care products/cosmetics and their ingredients \| Elsevier Enhanced Reader. https://reader.elsevier.com/reader/sd/pii/S0041008X09005018?token=303161A1C6C7396CAF9E7C7EF6EA87825B0A3613A0023A3FB4491C49A1E6489879E0480F67978EB4BD2AFAF47DB65D7F&originRegion=us-east-1&originCreation=20210916234704.Papadopoulos A, Assimomytis N, Varvaresou A. Sample Preparation of Cosmetic Products for the Determination of Heavy Metals. Cosmetics. 2022;9(1). doi:10.3390/cosmetics9010021Heavy Metals and Human Health- Possible Exposure Pathways and the Competition for Protein Binding Sites.pdf.Witkowska D, Słowik J, Chilicka K. Review heavy metals and human health: Possible exposure pathways and the competition for protein binding sites. Molecules. 2021;26(19). doi:10.3390/molecules26196060Olusola JA, Akintan OB, Erhenhi HA, Osanyinlusi OO. Heavy Metals and Health Risks Associated with Consumption of Herbal Plants Sold in a Major Urban Market in Southwest, Nigeria. J Heal Pollut. 2021;11(31):1-11. doi:10.5696/2156-9614-11.31.210915Paithankar JG, Saini S, Dwivedi S, Sharma A, Chowdhuri DK. Heavy metal associated health hazards: An interplay of oxidative stress and signal transduction. Chemosphere. 2021;262. doi:10.1016/j.chemosphere.2020.128350Essential metals in health and disease - 1-s2.0-S0009279722003787-main.pdf.Olusola JA, Akintan OB, Erhenhi HA, Osanyinlusi OO. Heavy Metals and Health Risks Associated with Consumption of Herbal Plants Sold in a Major Urban Market in Southwest, Nigeria. J Heal Pollut. 2021;11(31):1-11. doi:10.5696/2156-9614-11.31.210915Bertagnolli C, Gurgel M, Guibal E. Chromium biosorption using the residue of alginate extraction from Sargassum filipendula. 2013.Coelho CM, de Andrade JR, da Silva MGC, Vieira MGA. Removal of propranolol hydrochloride by batch biosorption using remaining biomass of alginate extraction from Sargassum filipendula algae. Environ Sci Pollut Res. 2020;27(14):16599-16611. doi:10.1007/s11356-020-08109-4Cardoso SL, Moino BP, Costa CSD, Da Silva MGC, Vieira MGA. Evaluation of metal affinity of Ag+, Cd2+, Cr3+, Cu2+, Ni2+, Zn2+ and Pb2+ in residue of double alginate extraction from Sargassum filipendula seaweed. Chem Eng Trans. 2016;52:1027-1032. doi:10.3303/CET1652172Kleinübing, Sirlei Jaiana. Silviera Viera, Rodrigo. Masumi. Beppu M. Characterizatión and Evaluation of Copper and Nickel Biosorption on Acidic Sargassum filipendula. Mater Res. 2010;3:430-439.Kleinübing SJ, Vieira RS, Beppu MM, Guibal E, Da Silva MGC. Characterization and evaluation of copper and nickel biosorption on acidic algae Sargassum filipendula. Mater Res. 2010;13(4):541-550. doi:10.1590/S1516-14392010000400018Mohs RC, Greig NH. Drug discovery and development : Role of basic biological research. Alzheimer’s Dement Transl Res Clin Interv. 2017;(November):1-7. doi:10.1016/j.trci.2017.10.005Bahuguna A, Khan I, Bajpai VK, Kang SC. MTT assay to evaluate the cytotoxic potential of a drug. 2017:115-118. doi:10.3329/bjp.v12i2.30892Driskell RR, Lichtenberger BM, Hoste E, et al. architecture in skin development and repair. Nature. 2014;504(7479):277-281. doi:10.1038/nature12783Lynch MD, Watt FM. Fibroblast heterogeneity : implications for human disease. 2018;128(1).Leibiger C, Kosyakova N, Mkrtchyan H, Glei M, Liehr T. First Molecular Cytogenetic High Resolution Characterization of the NIH 3T3 Cell Line by Murine Multicolor Banding. 2013. doi:10.1369/0022155413476868Tolosa L, Donato MT, Gómez-lechón MJ. Chapter 26 General Cytotoxicity Assessment by Means of the MTT Assay. 2015;1250:333-348. doi:10.1007/978-1-4939-2074-7Kumar P, Nagarajan A, Uchil PD. Analysis of Cell Viability by the MTT Assay. 2018:469-472. doi:10.1101/pdb.prot095505chromium-compounds.pdf.Benson L, Reczek KK. A guide to United States cosmetic products compliance requirements. 2021. https://nvlpubs.nist.gov/nistpubs/ir/2021/NIST.IR.8178r1.pdf.Rev:1- Revisions indicated with a vertical line in the left margin. WHO:SDE:WSH:03.04:75:Rev:1 Arsenic in Drinking-water.pdf.Smedley PL, Kinniburgh DG. A review of the source, behaviour and distribution of arsenic in natural waters. Appl Geochemistry. 2002;17(5):517-568. doi:10.1016/S0883-2927(02)00018-5Mohan D, Pittman CU. Activated carbons and low cost adsorbents for remediation of tri- and hexavalent chromium from water. J Hazard Mater. 2006;137(2):762-811. doi:10.1016/j.jhazmat.2006.06.060FDA. Supporting document for recommended maximum lead level in cosmetic lip products and externally applied cosmetics. Docket No FDA-2014-D-2275. 2016:1-14.Al-Khafaji Z, Brito S, Bin BH. Zinc and Zinc Transporters in Dermatology. Int J Mol Sci. 2022;23(24). doi:10.3390/ijms232416165(CONTAM) EP on C in the FC, Schrenk D, Bignami M, et al. Update of the risk assessment of nickel in food and drinking water. EFSA J. 2020;18(11):e06268.Selenium in Drinking-water.pdf.Section DW. Manganese in. 1971;7359:475-481.contact sromatitis and dermatitis to nickel and palladium.pdf.Hinds C, Oxenford H, Cumberbatch J, Fardin F, Cashman A. Golden Tides: Management Best Practices for Influxes of Sragassum in the Caribbean with a focus on clean-up. Cent Resour Manag Environ Stud. 2016:17 pp. https://www.cavehill.uwi.edu/principal/getattachment/17762/Sargassum-Management-Brief.pdf.aspx.Milledge JJ, Harvey PJ. Golden Tides: Problem or golden opportunity? The valorisation of Sargassum from beach inundations. J Mar Sci Eng. 2016;4(3). doi:10.3390/jmse4030060Montoya Rosas E, Carlos Lira G&. Usos Y Aplicaciones De Las Macroalgas Marinas: Una Revisión. Bol Inst Ocean Venez. 2017;56(2):89-101.Melgarejo LM, Sánchez J, Chaparro A, et al. Aproximación al estado actual de la bioprospección en Colombia. 2002:334.Shibata T, Fujimoto K, Nagayama K, Yamaguchi K, Nakamura T. Inhibitory activity of brown algal phlorotannins against hyaluronidase. Int J Food Sci Technol. 2002;37(6):703-709. doi:10.1046/j.1365-2621.2002.00603.xPande J, Dhanki A, Padalia H, Chanda S. Pharmacognostic characterization, phytochemical and physicochemical evaluation of Sargassum wightii and Padina gymnospora, two brown seaweeds from Gujarat coast. Pharma Innov J. 2018;7(6):78-86. www.thepharmajournal.com.Lat: 04 00 00 N degrees minutes Lat: 4.0000 decimal degrees Long: 072 00 00 W degrees minutes Long: -72.0000 decimal degreeshttp://vocab.getty.edu/page/tgn/1000050ColombiaPublication50000000ORIGINALRinconStefanie_2025_AplicacionesCosmeticasMacroalgas.pdfRinconStefanie_2025_AplicacionesCosmeticasMacroalgas.pdfapplication/pdf6233898https://bibliotecadigital.udea.edu.co/bitstreams/800f8fce-76fd-4629-a450-030abfeb1586/download64a5fc3144ed80f7c21cd616a94669d6MD51trueAnonymousREADLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-814837https://bibliotecadigital.udea.edu.co/bitstreams/c72a30b2-fbd6-4444-9fd4-496cf4826816/downloadb76e7a76e24cf2f94b3ce0ae5ed275d0MD53falseAnonymousREADCC-LICENSElicense_rdflicense_rdfapplication/rdf+xml; charset=utf-81160https://bibliotecadigital.udea.edu.co/bitstreams/b3c8c0cf-fb17-4bfa-99dd-ed4189076c33/download5643bfd9bcf29d560eeec56d584edaa9MD55falseAnonymousREADTEXTRinconStefanie_2025_AplicacionesCosmeticasMacroalgas.pdf.txtRinconStefanie_2025_AplicacionesCosmeticasMacroalgas.pdf.txtExtracted texttext/plain102069https://bibliotecadigital.udea.edu.co/bitstreams/88450c2e-e04c-44ac-bb02-7098b8ad0f82/download269a0b76916a2991de0000faa571293cMD56falseAnonymousREADTHUMBNAILRinconStefanie_2025_AplicacionesCosmeticasMacroalgas.pdf.jpgRinconStefanie_2025_AplicacionesCosmeticasMacroalgas.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg6768https://bibliotecadigital.udea.edu.co/bitstreams/1bee07d3-bbe5-4d87-a556-5d255d98369b/downloada8f9947e1a20d44a7c6d33c5f91ea947MD57falseAnonymousREAD10495/46000oai:bibliotecadigital.udea.edu.co:10495/460002025-05-20 04:10:12.638http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 Internationalopen.accesshttps://bibliotecadigital.udea.edu.coRepositorio Institucional de la Universidad de Antioquiaaplicacionbibliotecadigitalbiblioteca@udea.edu.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

Evaluación de aplicaciones cosméticas de extractos de las macroalgas del caribe colombiano Sargassum filipendula y Gracilariopsis tenuifrons con un enfoque en foto-protección, actividad antioxidante, anti-edad y agentes reológicos

Publicaciones similares