Efecto de Radopholus similis en el crecimiento de genotipos de musáceas de importancia económica

El objetivo de este estudio fue evaluar la respuesta de cuatro materiales de musáceas a diferentes densidades de población de R. similis en condiciones de almácigo. A los 45 días después de siembra, 448 plántulas de plátano (Musa AAB ‘Dominico hartón’, Musa ABB ‘Guineo’) y de banano (Musa AAA ‘Gros...

Full description

Autores:
Tipo de recurso:
Fecha de publicación:
2022
Institución:
Universidad de Caldas
Repositorio:
Repositorio Institucional U. Caldas
Idioma:
spa
OAI Identifier:
oai:repositorio.ucaldas.edu.co:ucaldas/23450
Acceso en línea:
https://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/23450
https://doi.org/10.17151/bccm.2022.26.2.4
Palabra clave:
Densidades de población
factor de reproducción
Musa
Radopholus similis
variables de crecimiento
Population densities
Musa
Radopholus similis
reproduction factor
growth variables
Rights
openAccess
License
https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/
id REPOUCALDA_8ce66028977871820b7807bb2a33cc63
oai_identifier_str oai:repositorio.ucaldas.edu.co:ucaldas/23450
network_acronym_str REPOUCALDA
network_name_str Repositorio Institucional U. Caldas
repository_id_str
dc.title.none.fl_str_mv Efecto de Radopholus similis en el crecimiento de genotipos de musáceas de importancia económica
Effect of Radopholus similis on the growth of economic importance musaceae genotypes
title Efecto de Radopholus similis en el crecimiento de genotipos de musáceas de importancia económica
spellingShingle Efecto de Radopholus similis en el crecimiento de genotipos de musáceas de importancia económica
Densidades de población
factor de reproducción
Musa
Radopholus similis
variables de crecimiento
Population densities
Musa
Radopholus similis
reproduction factor
growth variables
title_short Efecto de Radopholus similis en el crecimiento de genotipos de musáceas de importancia económica
title_full Efecto de Radopholus similis en el crecimiento de genotipos de musáceas de importancia económica
title_fullStr Efecto de Radopholus similis en el crecimiento de genotipos de musáceas de importancia económica
title_full_unstemmed Efecto de Radopholus similis en el crecimiento de genotipos de musáceas de importancia económica
title_sort Efecto de Radopholus similis en el crecimiento de genotipos de musáceas de importancia económica
dc.subject.none.fl_str_mv Densidades de población
factor de reproducción
Musa
Radopholus similis
variables de crecimiento
Population densities
Musa
Radopholus similis
reproduction factor
growth variables
topic Densidades de población
factor de reproducción
Musa
Radopholus similis
variables de crecimiento
Population densities
Musa
Radopholus similis
reproduction factor
growth variables
description El objetivo de este estudio fue evaluar la respuesta de cuatro materiales de musáceas a diferentes densidades de población de R. similis en condiciones de almácigo. A los 45 días después de siembra, 448 plántulas de plátano (Musa AAB ‘Dominico hartón’, Musa ABB ‘Guineo’) y de banano (Musa AAA ‘Gros Michel’ y Musa AA ‘Bananito’) fueron inoculadas con 0, 100, 500, 1.000, 3.000, 5.000 y 10.000 hembras de R. similis. Las plantas se evaluaron a los 60 y 90 días después de la inoculación(ddi) bajo un diseño experimental completamente aleatorio. En las variables peso seco total de plántula-PSTP y longitud de raíces-LR, R. similis ocasionó más del 48% de reducción en promedio. Los materiales de plátano fueron más susceptibles al nematodo con poblaciones finales promedio en raíces-PFNR de 215.575 y 134.181 individuos/100g de raíces en ‘Guineo’ y ‘Dominico Hartón’, respectivamente; mientras que en ‘Gros Michel’ y ‘Bananito’ se obtuvieron 82.676 y 44.897 individuos, respectivamente. La población inicial del nematodo presentó una correlación lineal negativa (P<0,05) con el factor de reproducción-FR, es así que con poblaciones iniciales de 100 y 500 individuos el FR fue el más alto en todos los genotipos; por el contrario, con las poblaciones entre 1.000 y 10.000 individuos, el FR fue significativamente menor en los cuatro genotipos de musáceas. En conclusión, las plántulas de los materiales de plátano tuvieron menores valores en las variables PSTP y LR al igual que PFNR, mientras que en los materiales de banano el daño fue menor. 
publishDate 2022
dc.date.none.fl_str_mv 2022-07-01T00:00:00Z
2022-07-01T00:00:00Z
2022-07-01
2025-10-08T21:06:18Z
2025-10-08T21:06:18Z
dc.type.none.fl_str_mv Artículo de revista
http://purl.org/coar/resource_type/c_6501
Text
info:eu-repo/semantics/article
Journal article
info:eu-repo/semantics/publishedVersion
http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85
dc.type.coar.fl_str_mv http://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1
status_str publishedVersion
dc.identifier.none.fl_str_mv 0123-3068
https://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/23450
10.17151/bccm.2022.26.2.4
2462-8190
https://doi.org/10.17151/bccm.2022.26.2.4
identifier_str_mv 0123-3068
10.17151/bccm.2022.26.2.4
2462-8190
url https://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/23450
https://doi.org/10.17151/bccm.2022.26.2.4
dc.language.none.fl_str_mv spa
language spa
dc.relation.none.fl_str_mv 94
2
65
26
Boletín Científico Centro de Museos Museo de Historia Natural
Agronet. (2022). Reporte: área, producción y rendimiento nacional por cultivo. 2020. https://www.agronet.gov.co/estadistica/paginas/home.aspx?cod=1
Alarcón, R. y Castaño, J. (2006). Reconocimiento fitosanitario de las principales enfermedades del plátano Dominico Hartón (Musa sp. Simmonds). Agronomía, 14(1), 65-80.
Andrews, K. y Quezada, J. R. (1985). Manejo integrado de plagas insectiles en la agricultura. Ed. ZAP.
Aranzazu, H. F. (2002). El cultivo de plátano. Manual técnico. Manizales. 114 p.
Araya, M. (2004). Los fitonematodos del banano (Musa AAA Subgrupo Cavendish cultivares Grand Naine, Valery y Williams) su parasitismo y combate. En XVI Reunión Internacional Acorbat, publicación especial (pp. 84-105).
Blomme, G., de Beule, H., Swennen, R. L., Tenkouano, A. y De Waele, D. (2001). Horizontal distribution of root nematode damage in six Musa spp. genotypes. African Plant Protection, 7(2), 73-80.
Cañizares, C. (2003). Estudio sobre poblaciones de hongos endofíticos provenientes de suelos supresivos al nematodo barrenador Radopholus similis (cobb) Thorne en plantaciones comerciales de plátano en la zona de Talamanca, Costa Rica. Tesis Mag. Sc. Turrialba, CR, CATIE. 87 p.
Chávez-Velazco, C., Solórzano-Figueroa, F. y Araya-Vargas, M. (2009). Relación entre nematodos y la productividad del banano (Musa AAA) en Ecuador. Agronomía Mesoamericana, 20(2), 351-360.
Daneel, M., De Jager, K., Van Den Bergh, I., De Smet, M. y De Waele, D. (2015). Occurrence and pathogenicity of plant- parasitic nematodes on commonly grown banana culti- vars in South Africa. Nematropic, 45, 118-127.
Dochez, C., Dusabe, J., Whyte, J., Tenkouano, A., Ortiz, R. y De Waele, D. (2006). New sources of resistance to Radopholus similis in Musa germplasm from Asia. Australasian Plant Pathology, 35(5), 481-485.
Elsen, A., Stoffelen, R., Tuyet, N. T., Baimey, H., De Boulois, H. D. y De Waele, D. (2002). In vitro screening for resistance to Radopholus similis in Musa spp. Plant Science, 163(3), 407-416.
Fallas, G. y Marbán-Mendoza, N. (1994). Respuesta de tres cultivares y un hibrido de Musa a Radopholus similis en Costa Rica. Nematropica, 24(2), 161-164.
Fallas, G. A., Sarah, J. L. y Fargette, M. (1995). Reproductive fitness and pathogenicity of eight Radopholus similis isolates on banana plants (Musa AAA cv. Poyo). Nematropica, 25(2), 135- 141.
Fogain, R. y Gowen, S. R. (1997). Damage to roots of Musa cultivars by Radopholus similis with and without protection of nematicides. Nematropica, 27(1), 27-32.
Fogain, R. y Gowen, S. R. (2000). Damage to roots of Musa cultivars by Radopholus similis with and without protection of nematicides. Nematropica, 27(1), 27-32.
Gowen, S. y Quénéhervé, P. (1995). Nematode parasites of bananas, plantains and abaca. In M. Luc, A. Sikora, J. Bridge (Eds.), Plant parasitic nematodes in subtropical and tropical agriculture. CAB International.
Guzmán-P, O. A. y Castaño, J. (2004). Reconocimiento de nematodos fitopatógenos en plátano Dominico Hartón (Musa AAB Simmonds), África, FHIA-20 y FHIA-21 en la granja Montelindo, municipio de Palestina (Caldas), Colombia. Revista Academia Colombiana de la Ciencia, 28(107 ), 295-301.
Guzmán-,P., O. A. (2011). El nematodo barrenador (Radopholus similis [Cobb] Thorne) del banano y plátano. Revista Luna Azul, 32 , 137-153.
Guzmán-P., O. A., Castaño-Z., J. y Villegas,-E., B. (2012a). Efectividad de la sanidad de cormos de plátano Dominico Hartón (Musa AAB Simmonds), sobre nematodos fitoparásitos y rendimiento del cultivo. Rev. Acad. Colomb. Cienc, 36(138), 45-55.
Guzmán-P., O. A, Castaño, J. y Villegas, E. B. (2012b). Principales nematodos fitoparásitos y síntomas ocasionados en cultivos de importancia económica. Agronomía, 20(1), 38-50.
Guzmán-P., O. A., Zamorano, C. y López, H. D. (2020). Interacciones fisiológicas de plantas con nematodos fitoparásitos: una revisión. Bol. Cient. MusHist. Nat. U. de Caldas, 24(2), 190-205. https://doi.org/10.17151/bccm.2020.24.2.13
Hahn, M. L., Sarah, J. L., Boisseau, M., Vines, N. J., Wright, D. J. y Burrows, P. R. (1996). Reproductive fitness and pathogenicity of selected Radopholus populations on two banana cultivars. Plant Pathology, 45(2), 1-9.
Herradura, L. E., Lobres, M. A. N., De Waele, D., Davide, R. G. y Van Den Bergh, I. (2012). Yield response of four popular banana varieties from southeast Asia to infection with a population of Radopholus similis from Davao, Philippines. Nematology, 14(7), 889-897.
Jenkins, W. R. (1964). A rapid centrifugal flotation technique for separating nematodes from soil. Plant Disease Reporter, 48(9 ), 692.
Loos, A. C. (1961). Eradication of the burrowing nematode, Radopholus similis from bananas. Plant Disease Reporter, 45(6), 457-461.
Lugo, U. L., Rivas, P. G., Rojas, M. T. y Vásquez M. N. (2000). Options for the management of Radopholus similis on banana with endomycorrhizal fungi and compost. Manejo Integrado de Plagas, (58), 28-38.
Marin, D. H., Barker, K. R., Kaplan, D. T., Sutton, T. B. y Opperman, C. H. (1999). Aggressiveness and damage potential of Central American and Caribbean populations of Radopholus spp. in banana. Journal of Nematology, 31(4 ), 377-385.
Marin, D. H., Barker, K. R., Kaplan, D. T., Sutton, T. B. y Opperman, C. H. (2000). Development and evaluation of a standard method for screening for resistance to Radopholus similis in bananas. Plant Disease, 84(6), 689-693.
Martínez, H., Pena, Y. y Espinal, C. (2006). La cadena productiva de plátano en Colombia: una mirada global de su estructura y dinámica 1991-2005. En: Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Documento de trabajo No. 102. Bogotá, Colombia. https://bit.ly/3bmVUQW
Mateille, T. (1992). Comparative development of three banana-parasitic nematodes on Musa acuminata (AAA group) cv. Poyo and Gros Michel vitro-plants. Nematologica, 38(1), 203-214.
Moens, T., Araya, M. y De Waele, D. (2001). Correlations between nematode numbers and damage to banana (Musa AAA) roots under commercial conditions. Nematropica, 31(1), 55-65.
Moens, T., Araya, M., Swennen, R., De Waele, D. y Sandoval, J. (2003). Effect of growing medium, inoculum density, exposure time and pot volume: Factors affecting the resistance screening for Radopholus similis in banana (Musa spp.). Nematropica, 33(1), 9-26.
Oostenbrink, R. (1966). Major characteristics of the relation between nematodes and plants. Mededeelingen der Landbouw-Hoogeschool, 66, 1-46.
Pattison, A. (2006). Banana farm management effects on soil health and plant-parasitic nematodes in Costa Rica.
Ploetz, R. (2004). Enfermedades y plagas: Un análisis de su importancia y manejo. InfoMusa, 13(2), 11-16.
Plowright, R., Dusabe, J., Coyne, D. y Speijer, P. (2013). Analysis of the pathogenic variability and genetic diversity of the plantparasitic nematode Radopholus similis on bananas. Nematology, 15(1), 41-56.
Pocasangre, L. E., Menjivar, R. D., Zum-Felde, A., Riveros, A. E., Rosales, F. E. y Sikora, R. A. (2007). Hongos endofíticos como agentes biológicos de control de fitonematodos en banano. In XVII Reunión Internacional de ACORBAT (pp 249-54).
Price, N. S. (1994). Field trial evaluation of nematode susceptibility within Musa. Fundamental and Applied Nematology, 17(5), 391-396.
Queneherve, P. (1988). Population of nematodes in soils under banana cv. Poyo in the Ivory Coast. 2. Influence of soil texture, pH and organic matter on nematode populations. Rev. Nématol., 11 (2), 245-251.
Robinson, J. C. y Galán-Saúco, V. (2010). Bananas and plantains (2nd Edition) Cab International.
Sarah, J. L., Sabatini, C. y Boisseau, M. (1993). Diferencias en la patogenicidad del banano (Musa sp., Cv. Poyo) entre aislamientos de Radopholus similis de diferentes áreas de producción del mundo. Nematropica, 23(1), 75-79.
Sarah, J. L., Pinochet, J. y Stanton, J. (1996). The burrowing nematode of bananas, Radopholus similis Cobb, 1913. Musa Pest Fact Sheet No. 1. INIBAP. http://www.bioversityinternational.org/publications/pdf/129.pdf.
Seenivasan, N. (2017a). Identification of burrowing nematode Radopholus similis, resistance in banana (Musa spp.) genotypes for natural and challenge inoculated populations. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 50(9-10), 415-437.
Seenivasan, N. (2017b). Management of Radopholus similis and Helicotylenchus multicinctus in ratoon banana grown under high density planting systems. International Journal of Fruit Science, 17(1), 41-62.
Sikora, R., Coyne, D. y Quénéhervé, P. (2018). Chapter 17: Nematode parasites of bananas and plantains. Pp. 617-657. In R. Sikora, D. Coyne, J. Hallmann y P. Timper (Eds.), Plant Parasitic Nematodes in Subtropical and Tropical Agriculture. CABI Publishing
Speijer, P. R. y De Waele, D. (1997). Screening of Musa germplasm for resistance and tolerance to nematodes. Inibap Technical Guidelines, 1, 47.
Speijer, P. R., Boonen, E., Vuylsteke, D., Swennen, R. L. y De Waele, D. (1999). Nematode reproduction and damage to Musa sword suckers and sword sucker derived plants. Nematropica, 29(2), 193-203.
Stoffelen, R., Jiménez, M., Dierckxsens, C., Tam, Vtt, Swennen, R. y De Waele, D. (1999). Effect of time and inoculum density on the reproductive fitness of Pratylenchus coffeae and Radopholus similis populations on carrot disks. Nematology, 1(3), 243-250. https://doi.org/10.1163/156854199508225
Suárez, C., Vera, D., Williams, R., Ellis, M. y Norton, G. (2002). Desarrollo de un programa de manejo integrado de plagas y enfermedades (MIPE), para sistema de producción basados en plátano en Quito, EC. INIAP, 16 , 59-66.
Tarté, R. y Pinochet, J. (1981). Problemas nematológicos del banano: contribuciones 96 recientes a su conocimiento y combate. INIBAP. 32 p.
Taylor, A. L. y Loegering, W. Q. (1953). Nematodes associated with root lesions in abacá. Turrialba, 3(1/2), 8-13.
Tripathi, L., Babirye, A., Roderick, H., Tripathi, J. N., Changa, C., Urwin, P. E. y Atkinson, H. J. (2015). Field resistance of transgenic plantain to nematodes has potential for future African food security. Scientific Reports, 5, 8127.
Triviño, G. C. (2003). Manejo de Nematodos en musáceas del Ecuador. In Programa y Resúmenes del Taller de Manejo Convencional y alternativas de la Sigatoka negra, nematodos y otras plagas asociadas al cultivo de musáceas. INIBAP.
Valencia, R., Guzmán, O., Villegas, B. y Castaño, J. (2014). Manejo integrado de nematodos fitoparásitos en almácigos de plátano Dominico Hartón (Musa AAB simmonds). Revista Luna Azul, 39, 165-185.
Van Vaerenbergh J., Baeyen S., De Vos P. y Maes, M. (2012). Sequence diversity in the Dickeya fliC gene: Phylogeny of the Dickeya genus and TaqMan® PCR for ‘D. solani’, New Biovar 3 variant on potato in Europe. PLoS ONE, 7(5 ), 35-38. http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0035738.
Viaene, N., Durán, L. F., Rivera, J. M., Dueñas, J., Rowe, P. y De Waele, D. (2003). Responses of banana and plantain cultivars, lines and hybrids to the burrowing nematode Radopholus similis. Nematology, 5(1), 85-98.
Núm. 2 , Año 2022 : Julio - Diciembre
https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/boletincientifico/article/download/7517/6590
dc.rights.none.fl_str_mv https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/
info:eu-repo/semantics/openAccess
http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
rights_invalid_str_mv https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/
http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
eu_rights_str_mv openAccess
dc.format.none.fl_str_mv application/pdf
dc.publisher.none.fl_str_mv Boletín Científico
publisher.none.fl_str_mv Boletín Científico
dc.source.none.fl_str_mv https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/boletincientifico/article/view/7517
institution Universidad de Caldas
repository.name.fl_str_mv
repository.mail.fl_str_mv
_version_ 1855532525676396544
spelling Efecto de Radopholus similis en el crecimiento de genotipos de musáceas de importancia económicaEffect of Radopholus similis on the growth of economic importance musaceae genotypesDensidades de poblaciónfactor de reproducciónMusaRadopholus similisvariables de crecimientoPopulation densitiesMusaRadopholus similisreproduction factorgrowth variablesEl objetivo de este estudio fue evaluar la respuesta de cuatro materiales de musáceas a diferentes densidades de población de R. similis en condiciones de almácigo. A los 45 días después de siembra, 448 plántulas de plátano (Musa AAB ‘Dominico hartón’, Musa ABB ‘Guineo’) y de banano (Musa AAA ‘Gros Michel’ y Musa AA ‘Bananito’) fueron inoculadas con 0, 100, 500, 1.000, 3.000, 5.000 y 10.000 hembras de R. similis. Las plantas se evaluaron a los 60 y 90 días después de la inoculación(ddi) bajo un diseño experimental completamente aleatorio. En las variables peso seco total de plántula-PSTP y longitud de raíces-LR, R. similis ocasionó más del 48% de reducción en promedio. Los materiales de plátano fueron más susceptibles al nematodo con poblaciones finales promedio en raíces-PFNR de 215.575 y 134.181 individuos/100g de raíces en ‘Guineo’ y ‘Dominico Hartón’, respectivamente; mientras que en ‘Gros Michel’ y ‘Bananito’ se obtuvieron 82.676 y 44.897 individuos, respectivamente. La población inicial del nematodo presentó una correlación lineal negativa (P<0,05) con el factor de reproducción-FR, es así que con poblaciones iniciales de 100 y 500 individuos el FR fue el más alto en todos los genotipos; por el contrario, con las poblaciones entre 1.000 y 10.000 individuos, el FR fue significativamente menor en los cuatro genotipos de musáceas. En conclusión, las plántulas de los materiales de plátano tuvieron menores valores en las variables PSTP y LR al igual que PFNR, mientras que en los materiales de banano el daño fue menor. The objective of this study was to evaluate the response of four musaceae materials to different population densities of R. similis under nursery conditions. Forty-five days after sowing, a total of 448 plantain seedlings (Musa AAB ‘Dominico hartón’, Musa ABB ‘Guineo’), and banana (Musa AAA ‘Gros Michel’ and Musa AA ‘Bananito’), were inoculated with 0, 100, 500, 1000, 3000, 5000 and 10,000 females of R. similis. The plants were evaluated at 60 and 90 days after inoculation-ddi of the nematode, under a completely randomized experimental design. In the variables total dry weight of seedling-TDWS and root length-RL, R. similis caused more than 48% reduction in average. Plantain materials were most susceptible to the nematode with average final root populations-FPNR of 215,575 and 134,181 individuals/100g of roots in ‘Guineo’ and ‘Dominico Hartón’, respectively, while in ‘Gros Michel’ and ‘Bananito’ 82,676 and 44,897 individuals were obtained, respectively. The initial population of the nematode presented a negative linear correlation (P<0.05) with the reproduction factor-RF, so that with initial populations of density of 100 and 500 individuals, the RF was the highest in all genotypes. On the contrary, with populations between 1,000 and 10,000 individuals, the RF was significantly lower in the four genotypes of Musaceae. In conclusion, the seedlings of theplantain materials had lower values in the TDWS and RL variables as well as FPNR, while for the banana materials the damage was lower. Boletín Científico2022-07-01T00:00:00Z2025-10-08T21:06:18Z2022-07-01T00:00:00Z2025-10-08T21:06:18Z2022-07-01Artículo de revistahttp://purl.org/coar/resource_type/c_6501Textinfo:eu-repo/semantics/articleJournal articleinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85http://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1application/pdf0123-3068https://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/2345010.17151/bccm.2022.26.2.42462-8190https://doi.org/10.17151/bccm.2022.26.2.4https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/boletincientifico/article/view/7517spa9426526Boletín Científico Centro de Museos Museo de Historia NaturalAgronet. (2022). Reporte: área, producción y rendimiento nacional por cultivo. 2020. https://www.agronet.gov.co/estadistica/paginas/home.aspx?cod=1Alarcón, R. y Castaño, J. (2006). Reconocimiento fitosanitario de las principales enfermedades del plátano Dominico Hartón (Musa sp. Simmonds). Agronomía, 14(1), 65-80.Andrews, K. y Quezada, J. R. (1985). Manejo integrado de plagas insectiles en la agricultura. Ed. ZAP.Aranzazu, H. F. (2002). El cultivo de plátano. Manual técnico. Manizales. 114 p.Araya, M. (2004). Los fitonematodos del banano (Musa AAA Subgrupo Cavendish cultivares Grand Naine, Valery y Williams) su parasitismo y combate. En XVI Reunión Internacional Acorbat, publicación especial (pp. 84-105).Blomme, G., de Beule, H., Swennen, R. L., Tenkouano, A. y De Waele, D. (2001). Horizontal distribution of root nematode damage in six Musa spp. genotypes. African Plant Protection, 7(2), 73-80.Cañizares, C. (2003). Estudio sobre poblaciones de hongos endofíticos provenientes de suelos supresivos al nematodo barrenador Radopholus similis (cobb) Thorne en plantaciones comerciales de plátano en la zona de Talamanca, Costa Rica. Tesis Mag. Sc. Turrialba, CR, CATIE. 87 p.Chávez-Velazco, C., Solórzano-Figueroa, F. y Araya-Vargas, M. (2009). Relación entre nematodos y la productividad del banano (Musa AAA) en Ecuador. Agronomía Mesoamericana, 20(2), 351-360.Daneel, M., De Jager, K., Van Den Bergh, I., De Smet, M. y De Waele, D. (2015). Occurrence and pathogenicity of plant- parasitic nematodes on commonly grown banana culti- vars in South Africa. Nematropic, 45, 118-127.Dochez, C., Dusabe, J., Whyte, J., Tenkouano, A., Ortiz, R. y De Waele, D. (2006). New sources of resistance to Radopholus similis in Musa germplasm from Asia. Australasian Plant Pathology, 35(5), 481-485.Elsen, A., Stoffelen, R., Tuyet, N. T., Baimey, H., De Boulois, H. D. y De Waele, D. (2002). In vitro screening for resistance to Radopholus similis in Musa spp. Plant Science, 163(3), 407-416.Fallas, G. y Marbán-Mendoza, N. (1994). Respuesta de tres cultivares y un hibrido de Musa a Radopholus similis en Costa Rica. Nematropica, 24(2), 161-164.Fallas, G. A., Sarah, J. L. y Fargette, M. (1995). Reproductive fitness and pathogenicity of eight Radopholus similis isolates on banana plants (Musa AAA cv. Poyo). Nematropica, 25(2), 135- 141.Fogain, R. y Gowen, S. R. (1997). Damage to roots of Musa cultivars by Radopholus similis with and without protection of nematicides. Nematropica, 27(1), 27-32.Fogain, R. y Gowen, S. R. (2000). Damage to roots of Musa cultivars by Radopholus similis with and without protection of nematicides. Nematropica, 27(1), 27-32.Gowen, S. y Quénéhervé, P. (1995). Nematode parasites of bananas, plantains and abaca. In M. Luc, A. Sikora, J. Bridge (Eds.), Plant parasitic nematodes in subtropical and tropical agriculture. CAB International.Guzmán-P, O. A. y Castaño, J. (2004). Reconocimiento de nematodos fitopatógenos en plátano Dominico Hartón (Musa AAB Simmonds), África, FHIA-20 y FHIA-21 en la granja Montelindo, municipio de Palestina (Caldas), Colombia. Revista Academia Colombiana de la Ciencia, 28(107 ), 295-301.Guzmán-,P., O. A. (2011). El nematodo barrenador (Radopholus similis [Cobb] Thorne) del banano y plátano. Revista Luna Azul, 32 , 137-153.Guzmán-P., O. A., Castaño-Z., J. y Villegas,-E., B. (2012a). Efectividad de la sanidad de cormos de plátano Dominico Hartón (Musa AAB Simmonds), sobre nematodos fitoparásitos y rendimiento del cultivo. Rev. Acad. Colomb. Cienc, 36(138), 45-55.Guzmán-P., O. A, Castaño, J. y Villegas, E. B. (2012b). Principales nematodos fitoparásitos y síntomas ocasionados en cultivos de importancia económica. Agronomía, 20(1), 38-50.Guzmán-P., O. A., Zamorano, C. y López, H. D. (2020). Interacciones fisiológicas de plantas con nematodos fitoparásitos: una revisión. Bol. Cient. MusHist. Nat. U. de Caldas, 24(2), 190-205. https://doi.org/10.17151/bccm.2020.24.2.13Hahn, M. L., Sarah, J. L., Boisseau, M., Vines, N. J., Wright, D. J. y Burrows, P. R. (1996). Reproductive fitness and pathogenicity of selected Radopholus populations on two banana cultivars. Plant Pathology, 45(2), 1-9.Herradura, L. E., Lobres, M. A. N., De Waele, D., Davide, R. G. y Van Den Bergh, I. (2012). Yield response of four popular banana varieties from southeast Asia to infection with a population of Radopholus similis from Davao, Philippines. Nematology, 14(7), 889-897.Jenkins, W. R. (1964). A rapid centrifugal flotation technique for separating nematodes from soil. Plant Disease Reporter, 48(9 ), 692.Loos, A. C. (1961). Eradication of the burrowing nematode, Radopholus similis from bananas. Plant Disease Reporter, 45(6), 457-461.Lugo, U. L., Rivas, P. G., Rojas, M. T. y Vásquez M. N. (2000). Options for the management of Radopholus similis on banana with endomycorrhizal fungi and compost. Manejo Integrado de Plagas, (58), 28-38.Marin, D. H., Barker, K. R., Kaplan, D. T., Sutton, T. B. y Opperman, C. H. (1999). Aggressiveness and damage potential of Central American and Caribbean populations of Radopholus spp. in banana. Journal of Nematology, 31(4 ), 377-385.Marin, D. H., Barker, K. R., Kaplan, D. T., Sutton, T. B. y Opperman, C. H. (2000). Development and evaluation of a standard method for screening for resistance to Radopholus similis in bananas. Plant Disease, 84(6), 689-693.Martínez, H., Pena, Y. y Espinal, C. (2006). La cadena productiva de plátano en Colombia: una mirada global de su estructura y dinámica 1991-2005. En: Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Documento de trabajo No. 102. Bogotá, Colombia. https://bit.ly/3bmVUQWMateille, T. (1992). Comparative development of three banana-parasitic nematodes on Musa acuminata (AAA group) cv. Poyo and Gros Michel vitro-plants. Nematologica, 38(1), 203-214.Moens, T., Araya, M. y De Waele, D. (2001). Correlations between nematode numbers and damage to banana (Musa AAA) roots under commercial conditions. Nematropica, 31(1), 55-65.Moens, T., Araya, M., Swennen, R., De Waele, D. y Sandoval, J. (2003). Effect of growing medium, inoculum density, exposure time and pot volume: Factors affecting the resistance screening for Radopholus similis in banana (Musa spp.). Nematropica, 33(1), 9-26.Oostenbrink, R. (1966). Major characteristics of the relation between nematodes and plants. Mededeelingen der Landbouw-Hoogeschool, 66, 1-46.Pattison, A. (2006). Banana farm management effects on soil health and plant-parasitic nematodes in Costa Rica.Ploetz, R. (2004). Enfermedades y plagas: Un análisis de su importancia y manejo. InfoMusa, 13(2), 11-16.Plowright, R., Dusabe, J., Coyne, D. y Speijer, P. (2013). Analysis of the pathogenic variability and genetic diversity of the plantparasitic nematode Radopholus similis on bananas. Nematology, 15(1), 41-56.Pocasangre, L. E., Menjivar, R. D., Zum-Felde, A., Riveros, A. E., Rosales, F. E. y Sikora, R. A. (2007). Hongos endofíticos como agentes biológicos de control de fitonematodos en banano. In XVII Reunión Internacional de ACORBAT (pp 249-54).Price, N. S. (1994). Field trial evaluation of nematode susceptibility within Musa. Fundamental and Applied Nematology, 17(5), 391-396.Queneherve, P. (1988). Population of nematodes in soils under banana cv. Poyo in the Ivory Coast. 2. Influence of soil texture, pH and organic matter on nematode populations. Rev. Nématol., 11 (2), 245-251.Robinson, J. C. y Galán-Saúco, V. (2010). Bananas and plantains (2nd Edition) Cab International.Sarah, J. L., Sabatini, C. y Boisseau, M. (1993). Diferencias en la patogenicidad del banano (Musa sp., Cv. Poyo) entre aislamientos de Radopholus similis de diferentes áreas de producción del mundo. Nematropica, 23(1), 75-79.Sarah, J. L., Pinochet, J. y Stanton, J. (1996). The burrowing nematode of bananas, Radopholus similis Cobb, 1913. Musa Pest Fact Sheet No. 1. INIBAP. http://www.bioversityinternational.org/publications/pdf/129.pdf.Seenivasan, N. (2017a). Identification of burrowing nematode Radopholus similis, resistance in banana (Musa spp.) genotypes for natural and challenge inoculated populations. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 50(9-10), 415-437.Seenivasan, N. (2017b). Management of Radopholus similis and Helicotylenchus multicinctus in ratoon banana grown under high density planting systems. International Journal of Fruit Science, 17(1), 41-62.Sikora, R., Coyne, D. y Quénéhervé, P. (2018). Chapter 17: Nematode parasites of bananas and plantains. Pp. 617-657. In R. Sikora, D. Coyne, J. Hallmann y P. Timper (Eds.), Plant Parasitic Nematodes in Subtropical and Tropical Agriculture. CABI PublishingSpeijer, P. R. y De Waele, D. (1997). Screening of Musa germplasm for resistance and tolerance to nematodes. Inibap Technical Guidelines, 1, 47.Speijer, P. R., Boonen, E., Vuylsteke, D., Swennen, R. L. y De Waele, D. (1999). Nematode reproduction and damage to Musa sword suckers and sword sucker derived plants. Nematropica, 29(2), 193-203.Stoffelen, R., Jiménez, M., Dierckxsens, C., Tam, Vtt, Swennen, R. y De Waele, D. (1999). Effect of time and inoculum density on the reproductive fitness of Pratylenchus coffeae and Radopholus similis populations on carrot disks. Nematology, 1(3), 243-250. https://doi.org/10.1163/156854199508225Suárez, C., Vera, D., Williams, R., Ellis, M. y Norton, G. (2002). Desarrollo de un programa de manejo integrado de plagas y enfermedades (MIPE), para sistema de producción basados en plátano en Quito, EC. INIAP, 16 , 59-66.Tarté, R. y Pinochet, J. (1981). Problemas nematológicos del banano: contribuciones 96 recientes a su conocimiento y combate. INIBAP. 32 p.Taylor, A. L. y Loegering, W. Q. (1953). Nematodes associated with root lesions in abacá. Turrialba, 3(1/2), 8-13.Tripathi, L., Babirye, A., Roderick, H., Tripathi, J. N., Changa, C., Urwin, P. E. y Atkinson, H. J. (2015). Field resistance of transgenic plantain to nematodes has potential for future African food security. Scientific Reports, 5, 8127.Triviño, G. C. (2003). Manejo de Nematodos en musáceas del Ecuador. In Programa y Resúmenes del Taller de Manejo Convencional y alternativas de la Sigatoka negra, nematodos y otras plagas asociadas al cultivo de musáceas. INIBAP.Valencia, R., Guzmán, O., Villegas, B. y Castaño, J. (2014). Manejo integrado de nematodos fitoparásitos en almácigos de plátano Dominico Hartón (Musa AAB simmonds). Revista Luna Azul, 39, 165-185.Van Vaerenbergh J., Baeyen S., De Vos P. y Maes, M. (2012). Sequence diversity in the Dickeya fliC gene: Phylogeny of the Dickeya genus and TaqMan® PCR for ‘D. solani’, New Biovar 3 variant on potato in Europe. PLoS ONE, 7(5 ), 35-38. http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0035738.Viaene, N., Durán, L. F., Rivera, J. M., Dueñas, J., Rowe, P. y De Waele, D. (2003). Responses of banana and plantain cultivars, lines and hybrids to the burrowing nematode Radopholus similis. Nematology, 5(1), 85-98.Núm. 2 , Año 2022 : Julio - Diciembrehttps://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/boletincientifico/article/download/7517/6590https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/info:eu-repo/semantics/openAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2Viveros Folleco, Yohana MaritzaGuzmán Piedrahita, Óscar AdriánVillegas Estrada, Bernardooai:repositorio.ucaldas.edu.co:ucaldas/234502025-10-08T21:06:18Z