Respuesta de cuatro especies de la sección lasiocarpa de la familia solanaceae a la inoculación de sclerotinia sclerotiorum
Ilustraciones, fotos
- Autores:
- Tipo de recurso:
- Fecha de publicación:
- 2023
- Institución:
- Universidad de Caldas
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- Repositorio Institucional U. Caldas
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- Palabra clave:
- Severidad
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Adams, P.B y Ayers, W.A. (1979). Ecology of Sclerotinia species. Phytopathology, 69, 896–898. Agrios, G. N. (2005). Plant pathology. 5ed. Elsevier. Pp.26 - 27 Aguilar-Ulloa, W., Arce-Acuña, P & Rivera-Méndez, W. (2016). Identificación y caracterización molecular del hongo causante de la pudrición blanca en Allium cepa, en Llano Grande de Cartago, Costa Rica. Revista Tecnología en Marcha, 29(Suppl 3), 51-56. https://dx.doi.org/10.18845/tm.v29i7.2705 Aldrich-Wolfe, L., Travers, S & Nelson, B.D. Jr. (2015). Genetic variation of Sclerotinia sclerotiorum from multiple crops in the north central United States. PLoS ONE 10: e0139188. https://doi.org/10.1371/ journal.pone.0139188. Bardin, S.D y Huang, H.C. (2001). Investigación sobre biología y control de las enfermedades de Sclerotinia en Canadá. Poder. J. Plant Pathol. 23, 88 - 98 Benítez, A., Valencia, J., Estrada, E & Baena, D., (1991). Phenotypic characterization of certain accessions in the lulo (Solanum quitoense) germplasm bank. In: Hawkes J, Lester RN, Nee M and Estrada N (Eds) Solanaceae III: Taxonomy, Chemistry, and Evolution. Royal Botanic Gardens Kew and Linnean Society of London, pp. 437-450. Bernal, J y Franco, G. (2017). Cultivo de Lulo bajo la implementación de buenas prácticas agrícolas BPA. Secretaria de agricultura y desarrollo rural de Antioquia. Medellín. 5-170. Bohs, L & Weese, T. L. (2007). A Three-Gene Phylogeny of the Genus Solanum (Solanaceae). Systematic Botany, 32, 445–463 Boland, G.J. & R. Hall. (1994). Index of plant hosts of Sclerotinia sclerotiorum. Canadian Journal of Plant Pathology. 16: 93-108. Bolton, M.D., Thomma, B.P.H.J & Nelson, B.D. (2006). Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary: Biology and molecular traits of cosmopolitan pathology. Mol Plant Pathol; 7:1-16. https://doi.org/10.1111/j.1364-3703.2005.00316.x Botero, M. (2001). Tabla y diagrama de severidad de antracnosis (Colletotrichum gloeosporiodes Penz.) en tomate de árbol. Citado en: Montes Rojas, C., Muñoz, L., Terán G, V., Prado C, F., & Quiñónez, M. (2010). Evaluación de patógenos en clones de lulo, 144-154. Braicovich, B. (2004). Solarización. Estación Experimental Agropecuaria Bordenave. Buenos Aires, Argentina. 80 p Cárdenas – Contreras, Z. E. (2009). Identificación de híbridos en lulo (Solanum quitoense Lam.) y tomate de árbol (Solanum betaceum Cav.) mediante el uso de marcadores cosii (tesis de magister). Pontificia Universidad Javeriana. Bogotá, D. C., Colombia Casierra, F., Peña, J., Peñaloza, J y Poveda, G. (2013). Influencia de la sombra y de las micorrizas sobre el crecimiento de plantas de lulo (Solanum quitoense Lam.). Rev. UDCA Act. Divul. Cient. 16(1):61-70. Castañeda, H. (1992). El lulo, su cultivo y su conservación. Pereira, CO. Ediciones Tecnológicas. s.p. Castro, W. (2019). La naranjilla (Solanum quitoense Lam.) en Ecuador. 3–4. https://dspace.uclv.edu.cu/bitstream/handle/123456789/12219/Naranjilla.pdf?sequ ence=1&isAllowed=y Diggle, P. K & Miller, J. S. (2013). Developmental plasticity, genetic assimilation, and the evolutionary diversification of sexual expression in Solanum. American journal of botany, 100(6), 1050–1060. https://doi.org/10.3732/ajb.1200647 Durman, S.B. (2003). Grupos de compatibilidad miceliana (MCGs) en poblaciones Bonaerenses de Sclerotinia Sclerotiorum. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Edafon. (2005). Monografía sobre Trichoderma spp. Fundación Agroecológica. Palmira, Colombia. En: http://controlbiologico. com/monog.tichobioll4.htm Escobar- Marulanda, N.M. (2012). Estudio microbiológico y evaluación de la actividad antibacterial del aceite de semilla de Solanum quitoense (lulo), variedad la selva proyecto de grado (trabajo de grado). Universidad tecnológica de Pereira. Pereira, Risaralda. Fernando, W.G.D., Nakkeeran, S & Zhang, Y. (2004). Ecofriendly methods in combating Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary. Recent Research in Developmental and Environmental Biology 1: 329-347. Ferreira, S. & R. Boyle. (1992). Sclerotinia. University of Hawaii at Manoa. En: http://www.extento.hawaii.edu/kbase/crop/ Type/s_scler.htm Flores, C., Buono, S y Giorgini, S. (2012). Guía de consulta Enfermedades de Tomate. 1a ed. INTA Yuto, 51 p. ISBN 978-987-679-168-7 Fory, P. (2005). Caracterización y análisis molecular de la diversidad genética de la colección colombiana de lulo (Solanum quitoense Lam.) y seis especies relacionadas de la sección Lasiocarpa. Universidad Nacional de Colombia. Cali, Palmira. Fory- Sánchez, P. A., Sánchez- Mosquera, I., Bohórquez- Cháux, A., Ramírez, H., Medina- Cano, C.I & Lobo- Arias, M. (2010). VARIABILIDAD GENÉTICA DE LA COLECCIÓN COLOMBIANA DE LULO (SOLANUM QUITOENSE LAM.) Y ESPECIES RELACIONADAS DE LA SECCIÓN LASIOCARPA. Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 63 (2), 5465-5476. Fuentes- Castillo, C. (2007). LOS POSTULADOS DE KOCH: REVISIÓN HISTÓRICA Y PERSPECTIVA ACTUAL. RCCV Vol. 1 (2). ISSN: 1988-2688 Gallozzi- Cálix, R y Duarte, O. (2007).cultivos de diversificación para pequeños productores de frijol y maíz en naranjilla (lulo) y cocona américa central. Instituto 31 Interamericano de Cooperación para la Agricultura (IICA). Managua, Nicaragua. García- Lozano, J., Chamorro, L. E., Floriano- Q, J. A., Vera, L. F y Segura, J.D. (2007). Enfermedades y plagas del cultivo del lulo (Solanum quitoense) en el departamento del Huila. CORPOICA. 28p. ISBN: 978-958-8311-62-3 Gómez-Merino, F. C., Trejo-Téllez, L. I., García-Albarado, J. C y Cadeña-Íñiguez, J (2014). Lulo (Solanum quitoense [Lamarck.]) Como cultivo novedoso en el paisaje agroecosistémico mexicano. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, (9), 1741- 1753. Hegedus, D. D & Rimmer, S. R. (2005). Sclerotinia sclerotiorum: When “to be or not to be” a pathogen? FEMS Microbiology Letters, 251(2), 177–184. https://doi.org/10.1016/j.femsle.2005.07.040. Heiser, C. B. (1972). The Relationships of the Naranjilla, Solanum quitoense. Biotropica, 4(2), 77–84. https://doi.org/10.2307/2989729. Heiser, C & Anderson, G. (1999). "New" Solanums. In: J. Janick (Editor). Perspectives on new crops and new uses. ASHS Press. Alexandria, VA. pp. 379- 384. Holdridge, L.R. (1967). “Life zone ecology”. San José, Costa Rica: Tropical Science Center. Lim, T.K. (2013). Solanum quitoense. En: Plantas medicinales y no medicinales comestibles. Springer, Dordrecht. https://doi.org/10.1007/978-94-007-5628-1_46. Lobo, M. (1991). Perspectivas de la siembra del Lulo o Naranjilla (Solanum quitoense Lam.). Boletín Técnico. Universidad Nacional de Colombia, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Palmira 2(2): 125-132. Lobo, M. (2000). Papel de la variabilidad genética en el desarrollo de los frutales andinos como alternativa productiva. En; Memorias 3r seminario de frutales de clima 32 frio moderado. Centro de desarrollo tecnológico de frutales. Manizales, caldas. P.27.36 Lobo, M. (2002). Papel de la variabilidad genética en el desarrollo de los frutales andinos como alternativa productiva, En: Memorias III Seminario de Frutales de Clima Frío Moderado. Manizales. p. 27–36. Lobo, M., Medina, C., Delgado, O y Bermeo, A. (2007). Variabilidad morfológica de la colección colombiana de lulo (Solanum quitoense Lam.) y especies seleccionadas de la sección Lasiocarpa. Rev. Fac. Nal. Agr. 60(2):3939-3964. LST. (2006). AgroGuard® Live Systems Technology S.A (LST). En: http://www.lstsa.com. Medina, C.I. (2003). Estudio de algunos aspectos Fisiológicos del lulo (Solanum quitoense Lam.) en el bosque húmedo montano bajo del oriente antioqueño. Tesis M.Sc., Universidad Nacional de Colombia, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Departamento de Ciencias Agronómicas, Medellín, Colombia. 249 p. Medina, C., Lobo, M y Martínez, E. (2009). Revisión del estado del conocimiento sobre la función productiva del lulo (Solanum quitoense Lam.) en Colombia. Corpoica Cienc. Y Tecnol. Agropecu. 10(2):167–179.Doi: https://doi.org/10. 21930/rcta.vol 10 Num 2 art: 139. Merchán, V. M., Roldán, A y Pérez, B. (2000). Vigilancia fitosanitaria en frutales en clima frío en el departamento de Caldas. En: Memoria tercer seminario de frutales del clima frío moderado. Centro de desarrollo tecnológico de frutales. Manizales, p. 270-277. Messinger, J., Martini, MMF., Rossi, G., Samuels, J & Lauerer, M. (2016). Successful pollination of the Neotropical crop Solanum quitoense by Bombus terrestris: Behaviour, efficiency and yield. J. Appl. Entomol. 140 (1-2):124–134. Doi: http://dx. doi.org/10.1111/jen.12237. Mondito, P. (2005). Sclerotinia sclerotiorum. Cátedra de fitopatología, Facultad de 33 Agronomía, Montevideo, Uruguay. En: http:// www.pvfagro.edu.uy/fitopato/enfermedades/ Sclerotinialechuga.htm. Mora-Romero, G. A., López-Meyer, M., Ramírez-Douriet, C. M., MartínezValenzuela, M. D. C., Romero-Urías, C. D. L. Á., Herrera-Rodríguez, G., & FélixGastélum, R. (2016). EVALUACIÓN DE LA SUSCEPTIBILIDAD A Sclerotinia sclerotiorum EN CUATRO GENOTIPOS DE FRIJOL (Phaseolus vulgaris L.) MICORRIZADOS. Interciencia, 41(2), 127-132. Negrillo, A. M. C., González, A. P., & Fernández, J. J. F. (2009). El moho blanco: una enfermedad común en el cultivo de Faba Granja Asturiana. Tecnología agroalimentaria: Boletín informativo del SERIDA, (6), 7-9. Nutter, F. W., Esker, P. D., & Netto, R. A. C. (2006). Disease assessment concepts and the advancements made in improving the accuracy and precision of plant disease data. European Journal of Plant Pathology, 115(1), 95-103. https://doi.org/10.1007/s10658-005-1230-z Ordóñez-Valencia, C., Ferrera-Cerrato, R., Quintanar-Zúñiga, R.E., Flores-Ortiz, C.M., Guzmán, G.J.M., Alarcón, A., Larsen, J & García-Barradas, O. (2014). Morphological development of sclerotia by Sclerotinia sclerotiorum: a view from light and scanning electron microscopy. Ann Microbiol 65:765–770. Ordóñez-Valencia, C., Ferrera-Cerrato, R., Alarcón, A., Hernández-Cuevas, L. V & Larsen, J. (2018). Desarrollo morfológico temprano de esclerocios por Sclerotinia sclerotiorum en presencia de bicarbonato de potasio. Revista Mexicana de Fitopatología, Mexican Journal of Phytopathology, 36(3), 363–378. https://doi.org/10.18781/r.mex.fit.1803-4. Obregón, V. (2014). Guía para la identificación de las enfermedades de tomate en invernadero. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria. Ortiz-Martínez, L. E., Ochoa-Martínez, D. L., Rojas-Martínez, R. I., Aranda-Ocampo, S., & Cruz, M. Á. G. (2022). Respuesta de variedades de chile a la infección con 34 Tomato brown rugose fruit virus. Summa Phytopathologica, 47, 209-215 Pacheco, R. (1985). El cultivo de la naranjilla en el Ecuador. Quito, EC. s.e. p. 1-35 Papavizas, G. (1985). Trichoderma and Gliocladium: biology, ecology and potential for biocontrol. Annu. Rev. Phytopathol. 23, 23-54. Petzoldt, R & Dickson, M.H. (1996). Straw test for resistance to white mold in beans. Annu. Rpt. Bean Improv. Coop. 39:142-143. Pineda-Giraldo, J., Calderón-quintero, A y Castaño-Zapata, J. (2017). Inducción in vitro del estado perfecto de Sclerotinia sclerotiorum (LIB.) de Bary. Editorial Universidad de Caldas. ISSN, 0124-7581. Ramírez, F., Kallarackal, J & Davenport, T. L. (2018). Lulo (Solanum quitoense Lam.) reproductive physiology: A review. Scientia Horticulturae, 238, 163–176. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2018.04.046 Reina, C., Araujo, C y Manrique, I. (1998). Manejo postcosecha y evaluación de la calidad del lulo (Solanum quitoense sp.) que se comercializa en la ciudad de Neiva. Universidad Sur colombiana. Revelo, J., Vásquez, W., Valverde, F., León, J y Gallegos, P. (2010). Manual del cultivo ecológico de la naranjilla. Manual Técnico No. 77. INIAP. Quito, Ecuador, 120 p. Rollins, J. A & Dickman, M. B. (2001). PH signaling in Sclerotinia sclerotiorum: Identification of a pacC/RIM1 homolog. Applied and Environmental Microbiology, 67(1), 75–81. https://doi.org/10.1128/AEM.67.1.75-81.2001. Rothmann, L. A & McLaren, N. W. (2018). Sclerotinia sclerotiorum disease prediction: A review and potential applications in South Africa. South African Journal of Science, 114(3–4), 1–9. https://doi.org/10.17159/sajs.2018/20170155. Saharan, G.S & Mehta, N. (2008). Reproduction and reproductive structures. Pp: 35 113-161. In: Saharan, G.S & Mehta, N. (Eds). Sclerotinia diseases of crop plants: biology, ecology and disease management. Springer. India. 418p. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-8408-9_8. Schulter, H & Cuatrecasas, J. (1958). Note on the lulo. Harvard University, Botanial museum leaflest. 16:97-105. Smits, G.B & Noguera, R. (1988). Ontogeny and morphogenesis of sclerotia and pycnidia of Macrophomina phaseolina. Agronomia Tropical Maracay 38:69-78. Sogamoso- Alape, H. J. (2020). Estudio preliminar de la respuesta fisiológica del lulo sin espinas (Solanum quitoense var. quitoense) expuesto a diferentes niveles de radiación durante la etapa vegetativa en la sabana de Bogotá (trabajo de grado). Universidad militar nueva Granada. Steadman, J. (1979). Control of plant diseases caused by Sclerotinia species. Phytopathol. 69(8), 904-907. Urbina, G. (2008). Evaluación agronómica de dos variedades y dos híbridos de naranjilla (Solanum quitoense Lam) y su respuesta a dos densidades de plantación en Julio Moreno, provincia de Bolívar. Tesis Ing. Agr. Guaranda: Universidad Estatal de Bolívar. 98 p. Whalen, M. D., Costich, D & Heiser, C. (1981). Taxonomy of Solanum Section Lasiocarpa. Gentes Herbarum. Vol. 12: 41-129. Whalen, M & Caruso, E. (1983). Philogeny in Solanum sect.Lasiocarpa (Solanaceae): congruence of morphological and molecular data. Systematic Botany 8:369-380 Wu, B. M., Peng, Y.L., Qin QM & Subbarao, R.V. (2007). Incubation of excised apothecia enhances ascus maturation of Sclerotinia sclerotiorum. Mycologia 99:33– 41. |
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Respuesta de cuatro especies de la sección lasiocarpa de la familia solanaceae a la inoculación de sclerotinia sclerotiorumSeveridadMoho blancoEsclerocioSolanumControl de plagasControl biológicoIlustraciones, fotosspa:El lulo o naranjilla pertenece al orden Solanales y la familia Solanaceae, es un cultivo frutal de gran importancia a nivel nacional e internacional. El género Solanum, contiene más de 1500 especies en todo el mundo, de las cuales ocho se localizan en Colombia. El cultivo de lulo presenta pérdidas del 66,2 % debido a plagas y enfermedades que son generadas por infecciones de microorganismos fitopatógenos principalmente por hongos. Sclerotinia sclerotiorum, es un hongo polífago causante del 27,5% de las pérdidas en los cultivos de lulo debido a que produce la enfermedad conocida como “moho blanco”, causa la necrosamiento de los tejidos vegetales y produce marchitez ocasionando la muerte de las plantas. La infección se da por medio de los esclerocios, es la principal manera de dispersión y son los responsables de la protección contra condiciones desfavorables y la degradación microbiana. El objetivo de este trabajo fue evaluar la respuesta a la inoculación de Sclerotinia sclerotiorum en cuatro especies de la sección Lasiocarpa en el jardín botánico de la Universidad de Caldas, Manizales. Las semillas de las especies de Solanum hirtum, Solanum vestissimum, Solanum pseudolulo y Solanum quitoense procedieron de la colección de trabajo del Herbario de la Universidad de Caldas. Las semillas fueron germinadas y 15 plantas por cada una de los cuatro genotipos fueron sembrados en bolsas a los 4 meses de edad. Los esclerocios fueron tomados de plantas infectadas de la finca Tesorito. Para realizar la inoculación de la plantas, se realizaron varios sub cultivos del hongo en el medio PDA. Se realizó la inoculación de S. sclerotiorum haciendo un corte en el tallo de las plantas para inocular el micelio sobre la herida del tallo. Se verifico la presencia de S. sclerotiorum mediante los postulados Koch. La evaluación de la severidad se realizó por medio del procesamiento de imágenes digitales con el programa ImageJ 1.46r, con el cual se midió el área total de cada uno de los tallos y el área afectada. Luego se determinó el porcentaje de severidad en cada uno de los tallos para calcular el promedio del porcentaje de severidad en cada genotipo. Se diseña una escala general de severidad que va del 1 al 9. Los resultados indican que S. vestissimum con una calificación entre 5 y 7 de severidad es la especie que tiene una respuesta de tolerancia frente a S. sclerotiorum. De otra parte, se observó que las especies S. hirtum y S. pseudolulo con porcentaje de 35% y 48% están en la escala 7 y 9 respectivamente de severidad, siendo más susceptibles que el testigo S. quitoense con 24% que corresponde a en la escala 5 de severidad.eng:The lulo or naranjilla belongs to the Solanales order and the Solanaceae family, is a fruit crop of great national and international importance. The genus Solanum contains more than 1500 species worldwide, of which eight are located in Colombia. The lulo crop shows losses of 66.2% due to pests and diseases caused by infections of phytopathogenic microorganisms, mainly fungi. Sclerotinia sclerotiorum is a polyphagous fungus that causes 27.5% of losses in lulo crops because it produces the disease known as "white mold", causes necrosis of plant tissues and wilting, resulting in plant death. Infection occurs through sclerotia, are the main means of dispersal and are responsible for protection against unfavorable conditions and microbial degradation. The objective of this work is to evaluate the response to Sclerotinia sclerotiorum inoculation in four species of section Lasiocarpa in the botanical garden of the Universidad de Caldas, Manizales. Seeds of Solanum hirtum, Solanum vestissimum, Solanum pseudolulo and Solanum quitoense species were taken from the working collection of the Herbarium of the Universidad de Caldas. The seeds were germinated and 15 plants for each of the four genotypes were planted in bags at 4 months of age. The sclerotia were taken from infected plants from the Tesorito farm. To inoculate the plants, several subcultures of the fungus were grown on PDA medium. Inoculation of S. sclerotiorum was performed a cut in the stem of the plants to inoculate the mycelium on the wound of the stem. The presence of S. sclerotiorum was verified using the Koch postulates. The evaluation of severity was carried out by processing digital images with ImageJ 1.46r, with which the total area of each of the stems and the affected area were measured. Then, the percentage of severity in each of the stems was determined to calculate the average of the percentage of severity in each genotype. A general severity scale ranging from 1 to 9 is designed. The results indicate that S. vestissimum with a severity rating between 5 and 7 is the species that has a tolerance response to S. sclerotiorum. On the other hand, it was observed that the species S. hirtum and S. pseudolulo with a percentage of 35% and 48% are in the scale 7 and 9 respectively of severity, being more susceptible than the control S. quitoense with 24% which corresponds to in the scale 5 of severity.Respuesta de cuatro especies de la sección lasiocarpa de la familia solanaceae a la inoculación de sclerotinia sclerotiorum 1. Introducción / 2. Objetivos / 2.1. Objetivo general / 2.2. Objetivos específicos / 3. Materiales y métodos / 3.1. Localización / 3.2. Laboratorio de fitopatología / 3.3. Material vegetal / 3.4. Material fúngico / 3.5. Incrementó del hongo Sclerotinia sclerotiorum / 3.6. Inoculación de Sclerotinia sclerotiorum / 3.7. Postulados de Koch / 3.8. Germinación de apotecios / 3.9. Evaluación de la severidad / 4. Resultados / 5. Discusión/ 6. Conclusiones / 7. Recomendaciones / 8. ReferenciasUniversitarioBiólogo(a)Facultad de Ciencias Exactas y NaturalesManizalesBiologíaSANTANA-FONSECA, GLORIA ESPERANZAAlvarez Mejía, Luis MiguelCorrea Fernández, Laura Manuela2023-03-24T12:36:59Z2023-03-24T12:36:59Z2023-03-23Trabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fTextinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesishttps://purl.org/redcol/resource_type/TPhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85application/pdfapplication/pdfapplication/pdfapplication/pdfhttps://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/18842Universidad de CaldasRepositorio Institucional Universidad de Caldashttps://repositorio.ucaldas.edu.co/engspaAdams, P.B y Ayers, W.A. (1979). Ecology of Sclerotinia species. Phytopathology, 69, 896–898.Agrios, G. N. (2005). Plant pathology. 5ed. Elsevier. Pp.26 - 27Aguilar-Ulloa, W., Arce-Acuña, P & Rivera-Méndez, W. (2016). Identificación y caracterización molecular del hongo causante de la pudrición blanca en Allium cepa, en Llano Grande de Cartago, Costa Rica. Revista Tecnología en Marcha, 29(Suppl3), 51-56. https://dx.doi.org/10.18845/tm.v29i7.2705Aldrich-Wolfe, L., Travers, S & Nelson, B.D. Jr. (2015). Genetic variation of Sclerotinia sclerotiorum from multiple crops in the north central United States. PLoSONE 10: e0139188. https://doi.org/10.1371/ journal.pone.0139188.Bardin, S.D y Huang, H.C. (2001). Investigación sobre biología y control de las enfermedades de Sclerotinia en Canadá. Poder. J. Plant Pathol. 23, 88 - 98Benítez, A., Valencia, J., Estrada, E & Baena, D., (1991). Phenotypic characterization of certain accessions in the lulo (Solanum quitoense) germplasm bank. In: Hawkes J, Lester RN, Nee M and Estrada N (Eds) Solanaceae III: Taxonomy, Chemistry, and Evolution. Royal Botanic Gardens Kew and Linnean Society of London, pp. 437-450.Bernal, J y Franco, G. (2017). Cultivo de Lulo bajo la implementación de buenas prácticas agrícolas BPA. Secretaria de agricultura y desarrollo rural de Antioquia. Medellín. 5-170.Bohs, L & Weese, T. L. (2007). A Three-Gene Phylogeny of the Genus Solanum (Solanaceae). Systematic Botany, 32, 445–463Boland, G.J. & R. Hall. (1994). Index of plant hosts of Sclerotinia sclerotiorum. Canadian Journal of Plant Pathology. 16: 93-108.Bolton, M.D., Thomma, B.P.H.J & Nelson, B.D. (2006). Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary: Biology and molecular traits of cosmopolitan pathology. Mol Plant Pathol; 7:1-16. https://doi.org/10.1111/j.1364-3703.2005.00316.xBotero, M. (2001). Tabla y diagrama de severidad de antracnosis (Colletotrichum gloeosporiodes Penz.) en tomate de árbol. Citado en: Montes Rojas, C., Muñoz, L., Terán G, V., Prado C, F., & Quiñónez, M. (2010). Evaluación de patógenos en clones de lulo, 144-154.Braicovich, B. (2004). Solarización. Estación Experimental Agropecuaria Bordenave. Buenos Aires, Argentina. 80 pCárdenas – Contreras, Z. E. (2009). Identificación de híbridos en lulo (Solanum quitoense Lam.) y tomate de árbol (Solanum betaceum Cav.) mediante el uso de marcadores cosii (tesis de magister). Pontificia Universidad Javeriana. Bogotá, D. C., ColombiaCasierra, F., Peña, J., Peñaloza, J y Poveda, G. (2013). Influencia de la sombra y de las micorrizas sobre el crecimiento de plantas de lulo (Solanum quitoense Lam.). Rev. UDCA Act. Divul. Cient. 16(1):61-70.Castañeda, H. (1992). El lulo, su cultivo y su conservación. Pereira, CO. Ediciones Tecnológicas. s.p.Castro, W. (2019). La naranjilla (Solanum quitoense Lam.) en Ecuador. 3–4. https://dspace.uclv.edu.cu/bitstream/handle/123456789/12219/Naranjilla.pdf?sequ ence=1&isAllowed=yDiggle, P. K & Miller, J. S. (2013). Developmental plasticity, genetic assimilation, and the evolutionary diversification of sexual expression in Solanum. American journal of botany, 100(6), 1050–1060. https://doi.org/10.3732/ajb.1200647Durman, S.B. (2003). Grupos de compatibilidad miceliana (MCGs) en poblaciones Bonaerenses de Sclerotinia Sclerotiorum. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires.Edafon. (2005). Monografía sobre Trichoderma spp. Fundación Agroecológica. Palmira, Colombia. En: http://controlbiologico. com/monog.tichobioll4.htmEscobar- Marulanda, N.M. (2012). Estudio microbiológico y evaluación de la actividad antibacterial del aceite de semilla de Solanum quitoense (lulo), variedad la selva proyecto de grado (trabajo de grado). Universidad tecnológica de Pereira. Pereira, Risaralda.Fernando, W.G.D., Nakkeeran, S & Zhang, Y. (2004). Ecofriendly methods in combating Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary. Recent Research in Developmental and Environmental Biology 1: 329-347.Ferreira, S. & R. Boyle. (1992). Sclerotinia. University of Hawaii at Manoa. En: http://www.extento.hawaii.edu/kbase/crop/ Type/s_scler.htmFlores, C., Buono, S y Giorgini, S. (2012). Guía de consulta Enfermedades de Tomate. 1a ed. INTA Yuto, 51 p. ISBN 978-987-679-168-7Fory, P. (2005). Caracterización y análisis molecular de la diversidad genética de la colección colombiana de lulo (Solanum quitoense Lam.) y seis especies relacionadas de la sección Lasiocarpa. Universidad Nacional de Colombia. Cali, Palmira.Fory- Sánchez, P. A., Sánchez- Mosquera, I., Bohórquez- Cháux, A., Ramírez, H., Medina- Cano, C.I & Lobo- Arias, M. (2010). VARIABILIDAD GENÉTICA DE LA COLECCIÓN COLOMBIANA DE LULO (SOLANUM QUITOENSE LAM.) Y ESPECIES RELACIONADAS DE LA SECCIÓN LASIOCARPA. Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 63 (2), 5465-5476.Fuentes- Castillo, C. (2007). LOS POSTULADOS DE KOCH: REVISIÓN HISTÓRICA Y PERSPECTIVA ACTUAL. RCCV Vol. 1 (2). ISSN: 1988-2688Gallozzi- Cálix, R y Duarte, O. (2007).cultivos de diversificación para pequeños productores de frijol y maíz en naranjilla (lulo) y cocona américa central. Instituto 31 Interamericano de Cooperación para la Agricultura (IICA). Managua, Nicaragua.García- Lozano, J., Chamorro, L. E., Floriano- Q, J. A., Vera, L. F y Segura, J.D. (2007). Enfermedades y plagas del cultivo del lulo (Solanum quitoense) en el departamento del Huila. CORPOICA. 28p. ISBN: 978-958-8311-62-3Gómez-Merino, F. C., Trejo-Téllez, L. I., García-Albarado, J. C y Cadeña-Íñiguez, J (2014). Lulo (Solanum quitoense [Lamarck.]) Como cultivo novedoso en el paisaje agroecosistémico mexicano. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, (9), 1741- 1753.Hegedus, D. D & Rimmer, S. R. (2005). Sclerotinia sclerotiorum: When “to be or not to be” a pathogen? FEMS Microbiology Letters, 251(2), 177–184. https://doi.org/10.1016/j.femsle.2005.07.040.Heiser, C. B. (1972). The Relationships of the Naranjilla, Solanum quitoense. Biotropica, 4(2), 77–84. https://doi.org/10.2307/2989729.Heiser, C & Anderson, G. (1999). "New" Solanums. In: J. Janick (Editor). Perspectives on new crops and new uses. ASHS Press. Alexandria, VA. pp. 379- 384.Holdridge, L.R. (1967). “Life zone ecology”. San José, Costa Rica: Tropical Science Center.Lim, T.K. (2013). Solanum quitoense. En: Plantas medicinales y no medicinales comestibles. Springer, Dordrecht. https://doi.org/10.1007/978-94-007-5628-1_46.Lobo, M. (1991). Perspectivas de la siembra del Lulo o Naranjilla (Solanum quitoense Lam.). Boletín Técnico. Universidad Nacional de Colombia, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Palmira 2(2): 125-132.Lobo, M. (2000). Papel de la variabilidad genética en el desarrollo de los frutales andinos como alternativa productiva. En; Memorias 3r seminario de frutales de clima 32 frio moderado. Centro de desarrollo tecnológico de frutales. Manizales, caldas. P.27.36Lobo, M. (2002). Papel de la variabilidad genética en el desarrollo de los frutales andinos como alternativa productiva, En: Memorias III Seminario de Frutales de Clima Frío Moderado. Manizales. p. 27–36.Lobo, M., Medina, C., Delgado, O y Bermeo, A. (2007). Variabilidad morfológica de la colección colombiana de lulo (Solanum quitoense Lam.) y especies seleccionadas de la sección Lasiocarpa. Rev. Fac. Nal. Agr. 60(2):3939-3964.LST. (2006). AgroGuard® Live Systems Technology S.A (LST). En: http://www.lstsa.com.Medina, C.I. (2003). Estudio de algunos aspectos Fisiológicos del lulo (Solanum quitoense Lam.) en el bosque húmedo montano bajo del oriente antioqueño. Tesis M.Sc., Universidad Nacional de Colombia, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Departamento de Ciencias Agronómicas, Medellín, Colombia. 249 p.Medina, C., Lobo, M y Martínez, E. (2009). Revisión del estado del conocimiento sobre la función productiva del lulo (Solanum quitoense Lam.) en Colombia. Corpoica Cienc. Y Tecnol. Agropecu. 10(2):167–179.Doi: https://doi.org/10. 21930/rcta.vol 10 Num 2 art: 139.Merchán, V. M., Roldán, A y Pérez, B. (2000). Vigilancia fitosanitaria en frutales en clima frío en el departamento de Caldas. En: Memoria tercer seminario de frutales del clima frío moderado. Centro de desarrollo tecnológico de frutales. Manizales, p. 270-277.Messinger, J., Martini, MMF., Rossi, G., Samuels, J & Lauerer, M. (2016). Successful pollination of the Neotropical crop Solanum quitoense by Bombus terrestris: Behaviour, efficiency and yield. J. Appl. Entomol. 140 (1-2):124–134. Doi: http://dx. doi.org/10.1111/jen.12237.Mondito, P. (2005). Sclerotinia sclerotiorum. Cátedra de fitopatología, Facultad de 33 Agronomía, Montevideo, Uruguay. En: http:// www.pvfagro.edu.uy/fitopato/enfermedades/ Sclerotinialechuga.htm.Mora-Romero, G. A., López-Meyer, M., Ramírez-Douriet, C. M., MartínezValenzuela, M. D. C., Romero-Urías, C. D. L. Á., Herrera-Rodríguez, G., & FélixGastélum, R. (2016). EVALUACIÓN DE LA SUSCEPTIBILIDAD A Sclerotinia sclerotiorum EN CUATRO GENOTIPOS DE FRIJOL (Phaseolus vulgaris L.) MICORRIZADOS. Interciencia, 41(2), 127-132.Negrillo, A. M. C., González, A. P., & Fernández, J. J. F. (2009). El moho blanco: una enfermedad común en el cultivo de Faba Granja Asturiana. Tecnología agroalimentaria: Boletín informativo del SERIDA, (6), 7-9.Nutter, F. W., Esker, P. D., & Netto, R. A. C. (2006). Disease assessment concepts and the advancements made in improving the accuracy and precision of plant disease data. European Journal of Plant Pathology, 115(1), 95-103. https://doi.org/10.1007/s10658-005-1230-zOrdóñez-Valencia, C., Ferrera-Cerrato, R., Quintanar-Zúñiga, R.E., Flores-Ortiz, C.M., Guzmán, G.J.M., Alarcón, A., Larsen, J & García-Barradas, O. (2014). Morphological development of sclerotia by Sclerotinia sclerotiorum: a view from light and scanning electron microscopy. Ann Microbiol 65:765–770.Ordóñez-Valencia, C., Ferrera-Cerrato, R., Alarcón, A., Hernández-Cuevas, L. V & Larsen, J. (2018). Desarrollo morfológico temprano de esclerocios por Sclerotinia sclerotiorum en presencia de bicarbonato de potasio. Revista Mexicana de Fitopatología, Mexican Journal of Phytopathology, 36(3), 363–378. https://doi.org/10.18781/r.mex.fit.1803-4.Obregón, V. (2014). Guía para la identificación de las enfermedades de tomate en invernadero. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria.Ortiz-Martínez, L. E., Ochoa-Martínez, D. L., Rojas-Martínez, R. I., Aranda-Ocampo, S., & Cruz, M. Á. G. (2022). Respuesta de variedades de chile a la infección con 34 Tomato brown rugose fruit virus. Summa Phytopathologica, 47, 209-215Pacheco, R. (1985). El cultivo de la naranjilla en el Ecuador. Quito, EC. s.e. p. 1-35Papavizas, G. (1985). Trichoderma and Gliocladium: biology, ecology and potential for biocontrol. Annu. Rev. Phytopathol. 23, 23-54.Petzoldt, R & Dickson, M.H. (1996). Straw test for resistance to white mold in beans. Annu. Rpt. Bean Improv. Coop. 39:142-143.Pineda-Giraldo, J., Calderón-quintero, A y Castaño-Zapata, J. (2017). Inducción in vitro del estado perfecto de Sclerotinia sclerotiorum (LIB.) de Bary. Editorial Universidad de Caldas. ISSN, 0124-7581.Ramírez, F., Kallarackal, J & Davenport, T. L. (2018). Lulo (Solanum quitoense Lam.) reproductive physiology: A review. Scientia Horticulturae, 238, 163–176. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2018.04.046Reina, C., Araujo, C y Manrique, I. (1998). Manejo postcosecha y evaluación de la calidad del lulo (Solanum quitoense sp.) que se comercializa en la ciudad de Neiva. Universidad Sur colombiana.Revelo, J., Vásquez, W., Valverde, F., León, J y Gallegos, P. (2010). Manual del cultivo ecológico de la naranjilla. Manual Técnico No. 77. INIAP. Quito, Ecuador, 120 p.Rollins, J. A & Dickman, M. B. (2001). PH signaling in Sclerotinia sclerotiorum: Identification of a pacC/RIM1 homolog. Applied and Environmental Microbiology, 67(1), 75–81. https://doi.org/10.1128/AEM.67.1.75-81.2001.Rothmann, L. A & McLaren, N. W. (2018). Sclerotinia sclerotiorum disease prediction: A review and potential applications in South Africa. South African Journal of Science, 114(3–4), 1–9. https://doi.org/10.17159/sajs.2018/20170155.Saharan, G.S & Mehta, N. (2008). Reproduction and reproductive structures. Pp: 35 113-161. In: Saharan, G.S & Mehta, N. (Eds). Sclerotinia diseases of crop plants: biology, ecology and disease management. Springer. India. 418p. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-8408-9_8.Schulter, H & Cuatrecasas, J. (1958). Note on the lulo. Harvard University, Botanial museum leaflest. 16:97-105.Smits, G.B & Noguera, R. (1988). Ontogeny and morphogenesis of sclerotia and pycnidia of Macrophomina phaseolina. Agronomia Tropical Maracay 38:69-78.Sogamoso- Alape, H. J. (2020). Estudio preliminar de la respuesta fisiológica del lulo sin espinas (Solanum quitoense var. quitoense) expuesto a diferentes niveles de radiación durante la etapa vegetativa en la sabana de Bogotá (trabajo de grado). Universidad militar nueva Granada.Steadman, J. (1979). Control of plant diseases caused by Sclerotinia species. Phytopathol. 69(8), 904-907.Urbina, G. (2008). Evaluación agronómica de dos variedades y dos híbridos de naranjilla (Solanum quitoense Lam) y su respuesta a dos densidades de plantación en Julio Moreno, provincia de Bolívar. Tesis Ing. Agr. Guaranda: Universidad Estatal de Bolívar. 98 p.Whalen, M. D., Costich, D & Heiser, C. (1981). Taxonomy of Solanum Section Lasiocarpa. Gentes Herbarum. Vol. 12: 41-129.Whalen, M & Caruso, E. (1983). Philogeny in Solanum sect.Lasiocarpa (Solanaceae): congruence of morphological and molecular data. Systematic Botany 8:369-380Wu, B. M., Peng, Y.L., Qin QM & Subbarao, R.V. (2007). Incubation of excised apothecia enhances ascus maturation of Sclerotinia sclerotiorum. Mycologia 99:33– 41.info:eu-repo/semantics/openAccessinfo:eu-repo/semantics/openAccessinfo:eu-repo/semantics/openAccessinfo:eu-repo/semantics/openAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2oai:repositorio.ucaldas.edu.co:ucaldas/188422024-07-22T20:49:00Z |