Evaluación de la integridad acrosómica en semen de verraco
Se ajustó un protocolo de evaluación de la integridad acrosomal de espermatozoides de verraco    en semen fresco fijado con glutaraldehído al 2%, para usarlo en semen diluido a 3×106 espermatozoides por ml en BSD-Lamons y refrigerado a 17°C. Se usaron 14 machos...
- Autores:
- Tipo de recurso:
- Fecha de publicación:
- 2022
- Institución:
- Universidad de Caldas
- Repositorio:
- Repositorio Institucional U. Caldas
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- Acceso en línea:
- https://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/25630
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Se ajustó un protocolo de evaluación de la integridad acrosomal de espermatozoides de verraco    en semen fresco fijado con glutaraldehído al 2%, para usarlo en semen diluido a 3×106 espermatozoides por ml en BSD-Lamons y refrigerado a 17°C. Se usaron 14 machos (3 de línea materna y 11  de línea paterna) muestreados en   tres ocasiones para evaluar la integridad acrosomal en semen fresco (F), al llegar al laboratorio (0h), y a las 24, 48 y  72h después. La morfología acrosómica se clasificó en grupos, así: borde apical normal (NAR), borde apical faltante (MAR), borde apical dañado (DAR) y capuchón acrosomal desprendido (LAC). El efecto del tiempo de almacenamiento y de la línea genética se evaluó mediante análisis de varianza, usando un modelo mixto para medidas repetidas en un mismo individuo. En general, se observaron dos patrones de respuesta en la integridad acrosomal. Los resultados de F y 0h no fueron diferentes entre sí, pero fueron diferentes de los resultados a 24, 48 y 72h, los cuales no fueron diferentes entre sí. El porcentaje de NAR fue mayor (P<0,001) en F y 0h (promedio 96,93±0,23%) que en 24, 48 y 72h (promedio 93,72±0,49%), y fue mayor en la línea materna que en la línea paterna (95,84±0,32 vs. 94,18±0,22%, respectivamente; P<0,001). Una técnica para la evaluación de la integridad acrosomal en semen fresco fue adaptada para emplearla en la evaluación de semen diluido, e indicó que puede emplearse para realizar evaluaciones seminales de control de calidad para semen diluido de uso comercial. |
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En general, se observaron dos patrones de respuesta en la integridad acrosomal. Los resultados de F y 0h no fueron diferentes entre sí, pero fueron diferentes de los resultados a 24, 48 y 72h, los cuales no fueron diferentes entre sí. El porcentaje de NAR fue mayor (P<0,001) en F y 0h (promedio 96,93±0,23%) que en 24, 48 y 72h (promedio 93,72±0,49%), y fue mayor en la línea materna que en la línea paterna (95,84±0,32 vs. 94,18±0,22%, respectivamente; P<0,001). Una técnica para la evaluación de la integridad acrosomal en semen fresco fue adaptada para emplearla en la evaluación de semen diluido, e indicó que puede emplearse para realizar evaluaciones seminales de control de calidad para semen diluido de uso comercial.ABSTRACT: A protocol for the evaluation of acrosomal integrity of fresh boar sperm fixed in 2% glutaraldehyde was adjusted for use in sperm diluted at 3×106 espermatozoa per ml in BSD-Lamons and refrigerated at 17°C. Fourteen sires sampled three times (3 of maternal and 11 of paternal line) were used to evaluate acrosomal integrity in fresh semen (F), at laboratory arrival (0h), and 24, 48, and 72 h later. Acrosomal morphology was classified in the following groups: normal apical ridge (NAR), missing apical ridge (MAR), damaged apical ridge (DAR), and loose acrosomal cap (LAC). The effects of storage time and genetic line were analyzed using ANOVA with a mixed model fore repeated measurements in the same individual. In general two response patterns were observed in acrosomal integrity. Results at F and 0h were not different between them, but were different from the results at 24, 48, and 72 h, which were not different among them. The percentage of NAR was higher (P<0.001) in F and 0h (mean 96.93±0.23%) than at 24, 48, and 72 h (mean 93.72±0.49%), and was higher in the maternal than in the paternal line (95.84±0.32 vs. 94.18±0.22%, respectively; P<0,001). A technique for the evaluation of acrosomal integrity in fresh semen was adapted for evaluation of diluted sperm, indicating that it can be used for seminal evaluations for quality control of commercially available diluted semen.Universidad de Caldas2022-03-17T01:14:51Z2025-10-08T21:58:46Z2022-03-17T01:14:51Z2025-10-08T21:58:46Z2022-03-17Artículo de revistahttp://purl.org/coar/resource_type/c_6501http://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1Textinfo:eu-repo/semantics/articleJournal articlehttp://purl.org/redcol/resource_type/ARTinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85application/pdfhttps://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/256302011-5415https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/vetzootec/article/view/5809https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/vetzootec/article/view/5809spa471411Revista Veterinaria y Zootecnia (On Line)Aguas, P.A.; Pinto, P. The acrosomal membrane of boar sperm: a golgi-derived membrane poor in glycoconjugates. Journal of Cell Biology, v.100, p.528-534, 1985.Campi, S.H.; Blasí, C.D.; Fischman, M.L. et al. Comparación entre dos test de funcionalidad de membrana para valorar semen de verraco. Veterinaria Argentina, v.21, p.421-426, 2004.Cerolini, S.; Maldjian, A.; Surai, P. et al. Viability, suceptibility to peroxidation and fatting acid composition of boar semen during liquid storage. Animal Reproduction Science, v.58, p.99-111, 2000.Fazeli, A.; Hage, W.J.; Cheng, F.P. et al. Acrosome-intact boar spermatozoa initiate binding to the homologous zona pellucida in vitro. Biology of Reproduction, v.56, p.430-438, 1997.Gadea, J. Los diluyentes de inseminación artificial porcina. Spanish Journal of Agriculture Research v.1, p.17- 27, 2003 (suppl.2).Sperm factors related to in vitro and in vivo porcine fertility. Theriogenology, v.63, p.431-444, 2005.Harrison, R.A.P. Sperm plasma membrane characteristics and boar semen fertility. Journal of Reproduction and Fertility, v.52, p.195-211, 1997.Johnson, R.K. Crossbreeding in swine: Experimental results. Journal of Animal Science, v.52, p.906-923, 1981.Pérez-Llano, B.; Sánchez, S.R.; Yánez, G.P. et al. Study of the evolution of boar spermatozoa populations according to their response to short HOST and their acrosomal status during preservation at 15°C. In: Sixth International Conference on Pig Reproduction, 2001, Columbia. Proceedings…University of Missouri; 2001. 50.Polakoski, K.L.; McRorie, R.A. Boar acrosin: classification, inhibition and specificity studies of a proteinase from sperm acrosomes. The Journal of Biology and Chemistry, v.248, p.8183-8188, 1973.Pursel, V.G.; Johnson, L.A. Glutaraldehyde fixations of boar spermatozoa for acrosome evaluation. Theriogenology, v.1, p.638-641, 1974.Pursel, V.G.; Johnson, L.A.; Rampaeck, G.B. Acrosome morphology of boar spermatozoa incubated before cold shock. Journal of Animal Science, v.34, p.278- 283, 1972.Pursel, V.G.; Johnson, L.A.; Schulman, L.L. Effect of dilution, seminal plasma and incubation period on cold shock susceptibility of boar spermatozoa. Journal of Animal Science, v.37, p.528-531, 1973.Rozeboom, K.J. Evaluating boar semen quality. Animal Science Facts, Extension Swine Husbandry. Publication number: ANS 00-812S, p.1-7, 2000.Saacke, R.G. Sperm morphology. 37th annual convention of the American association of bovine practitioners, Forth Worth, Texas. Pages 67-72 in Proc 2004.Sutkeviĕienë, N.; Žilinskas, H. Sperm morphology and fertility in artificial insemination boars. Veterinarija ir Zootechnika, v.26, p.11-13, 2004. 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