Evaluación de la Gonadotropina Coriónica Humana (HCG) a diferentes dosis, en la reproducción inducida de pargo lunarejo (Lutjanus guttatus, Stendaichner 1869) en condiciones de cautiverio

RESUMEN: El efecto de la Gonadotropina Coriónica Humana (HCG) sobre la maduración gonadal y la liberación de gametos, fue estudiado en la especie íctica marina pargo lunarejo (Lutjanus guttatus) en la Estación Acuícola Bahía Málaga. Se evaluaron 160 reproductores con peso promedio para hembras de 0,...

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Autores:
Tipo de recurso:
Fecha de publicación:
2022
Institución:
Universidad de Caldas
Repositorio:
Repositorio Institucional U. Caldas
Idioma:
spa
OAI Identifier:
oai:repositorio.ucaldas.edu.co:ucaldas/25589
Acceso en línea:
https://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/25589
https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/vetzootec/article/view/5634
Palabra clave:
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openAccess
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description RESUMEN: El efecto de la Gonadotropina Coriónica Humana (HCG) sobre la maduración gonadal y la liberación de gametos, fue estudiado en la especie íctica marina pargo lunarejo (Lutjanus guttatus) en la Estación Acuícola Bahía Málaga. Se evaluaron 160 reproductores con peso promedio para hembras de 0,53 kg y para machos de  0,55 kg; las hembras seleccionadas (ovocitos con diámetro de 353 micras) se repartieron en cuatro tratamientos: tratamiento testigo (sin hormona); tratamiento uno (1.000 UI de HCG/kg de peso vivo); tratamiento dos (1.500 UI de HCG/kg de peso vivo), y tratamiento tres (2.000 UI de HCG/kg de peso vivo). Los machos recibieron una sola dosis de HCG (100 UI de HCG/kg de peso vivo) y presentaron espermiación con una concentración de 2,6 x 109 espermatozoides/ml y tiempo de motilidad de 119 s. El tratamiento testigo no presentó respuesta positiva; en contraste, los demás tratamientos fueron efectivos en la inducción reproductiva presentando oocitos después de la inducción de 429,63 micras, tiempo de desove de 12,95 h después de la segunda inyección (huevos hidratados de 794 micras), fecundidad de 146.247 oocitos/kg de peso vivo de la hembra, fertilización de 69,3% y eclosión de 51,77% a las 12 h posfertilización (hpf) con larvas recién eclosionadas de 800 micras de longitud total promedio. 
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Revista Veterinaria y Zootecnia (On Line)
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Núm. 2 , Año 2009 : Julio - Diciembre
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Se evaluaron 160 reproductores con peso promedio para hembras de 0,53 kg y para machos de  0,55 kg; las hembras seleccionadas (ovocitos con diámetro de 353 micras) se repartieron en cuatro tratamientos: tratamiento testigo (sin hormona); tratamiento uno (1.000 UI de HCG/kg de peso vivo); tratamiento dos (1.500 UI de HCG/kg de peso vivo), y tratamiento tres (2.000 UI de HCG/kg de peso vivo). Los machos recibieron una sola dosis de HCG (100 UI de HCG/kg de peso vivo) y presentaron espermiación con una concentración de 2,6 x 109 espermatozoides/ml y tiempo de motilidad de 119 s. El tratamiento testigo no presentó respuesta positiva; en contraste, los demás tratamientos fueron efectivos en la inducción reproductiva presentando oocitos después de la inducción de 429,63 micras, tiempo de desove de 12,95 h después de la segunda inyección (huevos hidratados de 794 micras), fecundidad de 146.247 oocitos/kg de peso vivo de la hembra, fertilización de 69,3% y eclosión de 51,77% a las 12 h posfertilización (hpf) con larvas recién eclosionadas de 800 micras de longitud total promedio. ABSTRACT: The effect of human chorionic gonadotropin on gonadal maturation and the release of gametes was studied in the marine species spotted snapper (Lutjanus guttatus) in the Bahia Malaga Aquaculture Station. One-hundred sixty animals with an average weight for females of 0.53 kg and 0.55 kg for males were evaluated. The selected females (oocytes with a diameter of 353 µ) were divided into four treatments: control treatment (without hormone), treatment one (1,000 IU/kg body wt); treatment two (1,500 IU/kg body wt); treatment three (2,000 IU/kg body wt). Males only received one dose of HCG (100 IU/kg body wt); they presented spermiation with a concentration of 2.6 x 109 spermatozoa/ml and motility time of 119 seconds. The control treatment did not present a positive response; the other treatments were effective in reproductive induction presenting oocyte diameter after induction of 429.63 µ, voluntary spawning occurred 12.95 hours after the second injection (hydrated eggs of 794 µ), with a total of 146,247/kg female body wt eggs released; the fertilization rate was 69.3%, hatching of 51.77% occurred at 12 hours after fertilization and the average length of the larvae was 800 µ. Universidad de Caldas2022-03-17T01:14:25Z2025-10-08T21:58:28Z2022-03-17T01:14:25Z2025-10-08T21:58:28Z2022-03-17Artículo de revistahttp://purl.org/coar/resource_type/c_6501http://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1Textinfo:eu-repo/semantics/articleJournal articlehttp://purl.org/redcol/resource_type/ARTinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85application/pdfhttps://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/255892011-5415https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/vetzootec/article/view/5634https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/vetzootec/article/view/5634spa402283Revista Veterinaria y Zootecnia (On Line)Arnold, C.; Wakeman, M.; Williams, D.; et al. Spawning of red snapper (Lutjanus campechanus) in captivity. Journal of the world, v.10, n.15, p.30-302, 1978.Balza, M.; Gutiérrez, M.; Marín, B. Descripción morfológica y crecimiento en los primeros estadios larvarios de la sardina Sardinella aurita (Valenciennes, 1847) (Pisces: Clupeidae). Boletín del Instituto Oceanográfico, v.40, n.2, p.91-101, 2001.Blaxter, J. Pattern and variety in develpment. Nueva York, USA: Hoar W & D Randall, 1988. 58p.Cabrera, T.; Rosas, J.; Millán, J. Reproducción y desarrollo larvario del pargo dientón (Lutjanus griseus L. 1758) (Pisces: Lutjanidae) cultivado en cautiverio. Caribbean Journal of Science, v.33, n.3, p.239-245, 1997.Carvajal, M. Inducción a la maduración y desove del róbalo (Centropomus nigrescens) en cautiverio mediante la utilización de la hormona HCG (Gonadotropina Coriónica Humana) y LHRHa (Luteinizing Hormone Releasing Hormone Ethylamidae). Guayaquil, Ecuador: Escuela Superior Politécnica del Litoral, Facultad de Ingeniería Marítima y Ciencias del Mar, 1997. 90p. Tesis (Acuicultor).Cerqueira, V. Testes de indução de desova do robalo, Centropomus parallelus, do litoral da ilha de Santa Catarina com Gonadotropina Coriónica Humana (HCG). Brasil: [s.n.], 1991. 8p.Del Río, V.; Rosas, J.; Velásquez, A.; et al. Desarrollo embrionario, larval y tiempo de metamorfosis del pez tropical Xenomelaniris brasiliensis (Pisces: Atherindae). Núcleo de Nueva Esparta, v.3, n.5, p.32-72, 2005.Emata, A.; Eullaran, B.; Bagarinao, U. Induced spawning and early life description of the mangrove red snapper, Lutjanus argentimaculatus. Journal of the world, v.8, n.121, p.381-387, 1994.Lajonchere, L.; Hernández, O. Producción de juveniles de peces estuarinos para un centro en América Latina y el Caribe. México: Universidad Autónoma de Tabasco, 1994. 424p.López, P. 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Hormone induced spawning of the red snapper, Lutjanus campechanus. Journal of the world, v.3, n.30, p.350-368, 1983.Mojica, H. Informe de comisión. Colombia: [s.n.], 2002. 10p.Ortega, A.; Rodríguez, C. Evaluación comparativa del efecto del extracto pituitario de carpa (EPC) y gonadotropina coriónica humana (HCG) en la reproducción inducida del bagre del Patía (Rhamdia quelen). San Juan de Pasto, Colombia: Universidad de Nariño, 2004. 123p.Tesis (Ingeniero en Producción Acuícola).Querales, D. Descripción del desarrollo embrionario y larval de Paralabrax dewegeri Metzelaar, 1919 (Pisces: Serranidae). Boca de Río, Venezuela: Universidad de Oriente, 2001. 71p. Tesis (Licenciatura en ciencias marinas).Soletchinik, P.; Suquet, M.; Thouard, E.; et al. Spawning of yellowtail snapper (Ocyurus chrysurus Block 1791) in captivity. Journal of the world, v.5, n.77, p.287-289, 1989.Tamaru, C. Induced final maduration and spawning of the marbled groupers Epinephelus microdon captured from spawning aggregations in the Republic of Palau Micronesia. Journal of the world, v.4, n.27, p.363-372, 1996.Terán, P.; Rosales, M.; Dumas, S.; et al. Características reproductivas del huachinango del Pacífico (Lutjanus peru) en cautiverio. Panorama Acuícola Magazine, v.3, n.20, p.3-29, 2004.Watanabe, W.; Ellis, E.; Ellis, S.; et al. Artificial Propagation of Mutton Snapper Lutjanus analis, A New Candidate Marine Fish Species for Aquaculture. Journal of the world, v.29, n.2, p.176-187, 1998.Wudthisin, P. Propagation on the red snapper, Lutjanus argentimaculatus (Forsskal). Thailand: Marine Fisheries Division, 1984. 58p.Zohar, Y. Fish reproduction. Florida, USA: Shilo, M. & Saring, 1989. 119p.Núm. 2 , Año 2009 : Julio - Diciembrehttps://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/vetzootec/article/download/5634/5086https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/info:eu-repo/semantics/openAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2Mejía Narváez, Luisa MercedesRodríguez Araujo, Claudia LorenaLópez Macías, Jorge Nelsonoai:repositorio.ucaldas.edu.co:ucaldas/255892025-10-08T21:58:28Z

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